Resistenzbericht 2011
des Mikrobiologischen Laboratoriums im LKH Leoben
Verfasser:
Dr. Kurt Prein
DDr. Michael Gehrer
Theresia Fürpaß Biomedizinische Analytikerin
Steiermärkische Krankenanstalten
GesmbH
LKH Leoben
Institut für Pathologie
Mikrobiologisches Laboratorium
Vorstand: Prim. Dr. G. Leitner
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Resistenzbericht 2011
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Inhalt
EINLEITUNG ....................................................................................................................................................... 4
ORGANISATION UND RAHMENBEDINGUNGEN: .................................................................................................... 4 RESISTENZTESTUNG IM MIKROBIOLOGISCHEN LABOR DES LKH LEOBEN .......................................................... 4 ZU DIESEM BERICHT ............................................................................................................................................ 7
INFEKTIONSERREGER IM RESPIRATIONSTRAKT (INKLUSIVE NASENNEBENHÖHLEN,
OHREN UND AUGEN) ........................................................................................................................................ 9
ALLGEMEINES ..................................................................................................................................................... 9 STREPTOCOCCUS PYOGENES (STREPTOKOKKEN DER GRUPPE A) ...................................................................... 10 STREPTOKOKKEN DER GRUPPE C UND G ........................................................................................................... 11 STREPTOCOCCUS PNEUMONIAE ......................................................................................................................... 12 HAEMOPHILUS INFLUENZAE .............................................................................................................................. 14 MORAXELLA CATARRHALIS .............................................................................................................................. 15 PSEUDOMONAS AERUGINOSA (OHR) .................................................................................................................. 16 PSEUDOMONAS AERUGINOSA (TIEFER RESPIRATIONSTRAKT) ............................................................................ 16 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 17 KLEBSIELLA SP. (TIEFER RESPIRATIONSTRAKT) ................................................................................................ 19 BESONDERE ERREGER IM RESPIRATIONSTRAKT ................................................................................................ 19 MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS ..................................................................................................................... 20
INFEKTIONSERREGER IM GASTROINTESTINALTRAKT ................................................................... 21
SALMONELLA SP. ............................................................................................................................................... 22 CAMPYLOBACTER SP. ........................................................................................................................................ 22 SHIGELLA SP. ..................................................................................................................................................... 22 YERSINIA SP. ..................................................................................................................................................... 22 EHEC ................................................................................................................................................................ 23 AEROMONAS HYDROPHILA ................................................................................................................................ 23 CLOSTRIDIUM DIFFICILE .................................................................................................................................... 23 HELICOBACTER PYLORI ..................................................................................................................................... 24 ROTAVIRUS: ...................................................................................................................................................... 24
INFEKTIONSERREGER DER HARNWEGE ............................................................................................... 25
ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 25 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 26
Ciprofloxacinresistenz bei E.coli im Harn im Detail: .................................................................................. 26 PROTEUS-MORGANELLA-GRUPPE ..................................................................................................................... 28 KLEBSIELLA SP. ................................................................................................................................................. 29 PSEUDOMONAS AERUGINOSA ............................................................................................................................ 30 ENTEROBACTER-GRUPPE .................................................................................................................................. 30 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 31 STAPHYLOCOCCUS SAPROPHYTICUS .................................................................................................................. 31 ENTEROKOKKEN ................................................................................................................................................ 32
KEIMNACHWEIS AUS PROBEN DES WEIBLICHEN GENITALTRAKTS ........................................... 33
ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 33 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 34 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 34 STREPTOCOCCUS AGALACTIAE (STREPTOKOKKEN DER GRUPPE B) ................................................................... 35
INFEKTIONSERREGER AUS WUNDEN, DRAINS, ABSZESSEN ............................................................ 36
ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 36 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 37 KOAGULASE NEGATIVE STAPHYLOKOKKEN ...................................................................................................... 38 ENTEROKOKKEN ................................................................................................................................................ 38 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 39 PSEUDOMONAS AERUGINOSA ............................................................................................................................ 39 PROTEUS-MORGANELLA GRUPPE ...................................................................................................................... 40
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KLEBSIELLA SP. ................................................................................................................................................. 40
INFEKTIONSERREGER AUS BLUTKULTUREN ....................................................................................... 41
ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 41 KOAGULASE NEGATIVE STAPHYLOKOKKEN ...................................................................................................... 42 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 42 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 43
KEIME AUS LIQUORKULTUREN ................................................................................................................ 44
ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 44
KEIME VON GEFÄßKATHETERSPITZEN ................................................................................................. 45
ALLGEMEINES ................................................................................................................................................... 45 KOAGULASE NEGATIVE STAPHYLOKOKKEN ...................................................................................................... 46
KEIME AUS GELENKSPUNKTATEN ........................................................................................................... 47
STAPHYLOKOKKEN ............................................................................................................................................ 48
KEIME VON INTENSIVSTATIONEN ........................................................................................................... 49
PSEUDOMONAS AERUGINOSA ............................................................................................................................ 49 STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 50 ESCHERICHIA COLI ............................................................................................................................................ 51 KLEBSIELLA SP. ................................................................................................................................................. 51 ENTEROBACTER GRUPPE ................................................................................................................................... 52 STENOTROPHOMONAS MALTOPHILIA ................................................................................................................. 52
MULTIRESISTENTE ERREGER ................................................................................................................... 53
STAPHYLOCOCCUS AUREUS ............................................................................................................................... 53 MULTIRESISTENTE ENTEROBAKTERIEN UND BREITSPEKTRUMBETALAKTAMASEN............................................ 56
ESBL (extended spectrum Betalaktamase) ................................................................................................... 56 AmpC ............................................................................................................................................................ 56 Carbapenemresistenz ................................................................................................................................... 57
ANAEROBIER ................................................................................................................................................... 60
PILZE .................................................................................................................................................................. 62
ANHANG ............................................................................................................................................................. 64
INTERESSANTE LINKS: ....................................................................................................................................... 64 LITERATUR ........................................................................................................................................................ 64
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Einleitung
Organisation und Rahmenbedingungen:
Das Mikrobiologische Labor ist Teil des Pathologischen Instituts des LKH Leoben und führt seit
1978 mikrobiologische Untersuchungen für Einsender aus der Obersteiermark durch. Im Jahr 2011
stammen 94% der Proben aus Spitälern (stationär und ambulant) oder sonstigen Organisationen, 6%
von niedergelassenen Ärzten. Die Einsendungen kommen somit aus einem gut definierten
geographischen Bereich und sind in erster Linie repräsentativ für das „Krankenhaus Obersteiermark“.
Im Jahr 2011 wurden 42631 Untersuchungen in 37733 Proben für insgesamt 16326 Patienten
durchgeführt.
Institutsvorstand: Prim. Dr. Gerhard Leitner
MitarbeiterInnen
im Mikrobiolg.
Labor:
Theresia Fürpaß (BMA,Leiterin)
Corina Iordache
(BMA,Stv.)
Gerda Hold
(BMA)
Regina Jeitler
(BMA)
Sandra Mosleitner
(BMA)
Bettina Kernbichler
(BMA)
Irene Pretterhofer
(BMA)
Gerlinde Weberhofer
(BMA)
Amschl Helga
(Laborgehilfin)
Resistenztestung im Mikrobiologischen Labor des LKH Leoben
Die mikrobiologische Diagnostik des Labors orientiert sich an der Richtlinie „Standardisierung und
Qualitätssicherung in der mikrobiologischen Diagnostik“ (BM für soziale Sicherheit und Generation, Feb. 2001). Die
Auswahl der verwendeten Anreicherungs-, Universal- und Selektivmedien für den Keimnachweis
richtet sich nach dem am Entnahmeort zu erwartenden Erregerspektrum. Präzise Angaben über
Erkrankung und Entnahmeort sind dafür unumgängliche Voraussetzungen.
Die Resistenztestung erfolgt seit 1.3.2011 nach den Kriterien von EUCAST (European Committee on
Antimicrobial Susceptibility Testing, siehe www.eucast.org).
Sie wird bei Isolaten durchgeführt, die möglicherweise klinisch relevant sind.
Resistenztestungen werden mit dem Agardiffusionstest und mit VITEK 2 (bioMerieux, erhebt MHK-
Werte) durchgeführt. Bei seltenen und anspruchsvollen Keimen werden die MHK-Werte mittels E-
Test (Bio Merieux) ermittelt.
Abbildung 1: MHK-
Bestimmung mittels E-Test
Abbildung 2:
Agardiffusionstest
Abbildung 3:
Karte für die Bestimmung
von MHK-Werten im Vitek
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Für die diversen Bakterien-oder Pilzgruppen werden in Anlehnung an die Empfehlungen der
Österreichischen Gesellschaft für Chemotherapie, EUCAST und entsprechend den lokalen Usancen
jene Antibiotika routinemäßig getestet, die für die Therapie sinnvoll sind.
Keime Sinnvolle Therapie
Streptokokken ABCG
Penicillin, Aminopenicillin, Cefotaxim, Erythromycin, Clindamycin,
Tetracyclin, Imipenem, Levofloxacin, Moxifloxacin
In Blutkulturen und Liquorkulturen: Zusätzliche Angabe des MHK Wertes
von Ceftriaxon.
Ausnahmen
Streptokokken B in Genitalabstrichen bei Schwangeren: Penicillin,
Aminopenicillin, Cefotaxim, Erythromycin, Clindamycin, Imipenem
Streptokokken B im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam,
Cefuroxim, Cefotaxim, Nitrofurantoin
Streptokokken ACG im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam,
Cefuroxim, Cefotaxim, Trimethoprim+Sulfamethoxazol
Streptokokken
“Viridans”
Penicillin, Aminopenicillin, Cefotaxim, Clindamycin, Imipenem
In Blut und Liquorkulturen: Zusätzliche Angabe des MHK Wertes von
Penicillin und Ceftriaxon
Ausnahme
Im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Cefuroxim, Cefotaxim
Pneumokokken
Penicillin MHK Wert, Aminopenicillin, Cefotaxim, Erythromycin,
Clindamycin, Tetracyclin, Imipenem, Levofloxacin, Moxifloxacin
In Blutkulturen: Zusätzliche Angabe der MHK Werte von Meropenem,
Ceftriaxon und Vancomycin
Ausnahme
In Liquorkulturen: Nur Angabe der MHK Werte von Penicillin,
Meropenem, Ceftriaxon und Vancomycin
Enterokokken
Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Vancomycin, Teicoplanin,
Linezolid, Tigecyclin
In Blut und Liquorkulturen: Zusätzliche Testung des MHK Wertes von
Gentamycin um den Synergieeffekt von Penicillin oder Ampicillin mit
Gentamicin, bzw. Vancomycin mit Gentamicin bewerten zu können
Ausnahme
Im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Teicoplanin,
Vancomycin, Nitrofurantoin (nur bei Enterococcus faecalis)
Staphylokokken
Penicillin, Oxacillin, Augmentin, Gentamicin, Rifampicin, Erythromycin,
Clindamycin, Ciprofloxacin, Fusidinsäure, Linezolid, Tigecyclin
In Blut- und Liqurkulturen: Zusätzliche Angabe des MHK Wertes von
Vancomycin
Ausnahme
Im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Gentamicin,
Trimethoprim, Ciprofloxacin (für Staphylococcus saprophyticus
zusätzliche Angabe von Nitrofurantoin)
Enterobakterien
Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Cefuroxim, Cefotaxim,
Gentamicin, Imipenem, Meropenem, Ciprofloxacin
In Liquorkulturen: Zusätzliche Angabe des MHK Wertes von Ceftriaxon
Ausnahme
Im Harn: Aminopenicillin, Augmentin, Tazonam, Cefuroxim, Cefotaxim,
Gentamicin,Trimethoprim, Trimethoprim+Sulfamethoxazol,
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Ciprofloxacin. Für Escherichia Coli im Harn zusätzlich auch
Nitrofurantoin.
Pseudomonaden
Tazonam, Ceftazidim, Cefepim, Gentamicin, Amikacin, Imipenem,
Meropenem, Ciprofloxacin
Acinetobacter
Gentamicin, Amikacin, Imipenem, Meropenem, Ciprofloxacin, bei
Harnkeimen auch Trimethoprim+Sulfamethoxazol
Stenotrophomonas
maltophilia
Trimethoprim+Sulfamethoxazol, Minocyclin, Levofloxacin
Salmonellen,
Shigellen, Aeromonas
hydrophila
Aminopenicillin, Cefotaxim, Trimethoprim+Sulfamethoxazol, Ciproxin
Campylobacter
Tetracyclin, Ciprofloxacin, Erythromycin
Hämophilus
Aminopenicillin, Augmentin, Cefuroxim, Ceftriaxon, Moxifloxacin,
Tetracyclin
Blut und Liquorkulturen: Zusätzliche Angabe der MHK Werte von
Aminopenicillin, Ceftriaxon und Meropenem
Helicobacter pylori
Testung der MHK Werte von Amoxicillin, Clarithromycin, Metronidazol,
Tetracyclin, Levofloxacin, Rifampicin
Moraxella catarrhalis
Augmentin, Erythromycin, Ciprofloxacin, Doxycyclin
Meningokokken
Testung der MHK Werte von Penicillin, Ceftriaxon, Ciprofloxacin,
Rifampicin
Anaerobier
Angabe der MHK Werte von Augmentin und Metronidazol.
Candida
Amphotericin B, Caspofungin, Fluconazol, Voriconazol
Alle am Begleitschein angegebenen Antibiotika einer vorangegangen, derzeitigen
oder beabsichtigten Antibiotikatherapie werden zusätzlich getestet, sofern sie nicht in
der Routinetestung enthalten sind. Exakte Angaben am Begleitschein sind dafür die
Voraussetzung.
Eine Resistenztestung dauert in der Regel einen Tag, bei langsam wachsenden Keimen (z. B.
Helicobacter pylori) kann die Testung bis zu 2 Wochen in Anspruch nehmen.
Die Resistenz von Anaerobiern wird routinemäßig nur untersucht, wenn die empirische Therapie nicht
zielführend war oder eine Infektion durch eine Reinkultur vorliegt.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Resistenzbericht 2011
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Zu diesem Bericht
Die vorliegende Zusammenstellung ist nach den Jahren 2003, 2004, 2005, 2007 und 2009 der 6.
Bericht zur Resistenzlage des Mikrobiologischen Labors des LKH Leoben und lehnt sich in
Fragestellung und Layout wiederum an die Resistenzberichte des Instituts für Hygiene, Mikrobiologie
und Umweltmedizin der Medizinischen Universität Graz (Feierl, Buzina et al.) an. Dem interessierten
Leser soll damit ein Datenvergleich ermöglicht werden. (siehe auch www.hygiene-graz.at).
Die Daten stammen aus dem Befundprogramm des Mikrobiologischen Laboratoriums Leoben (PAS-
V2, Fa. GRZ Linz) und wurden nach bestem Wissen zusammengestellt. Die Grafiken am Beginn der
Kapitel enthalten alle Isolate und sollen einen groben Überblick über Häufigkeiten der Isolate und der
betroffenen Patienten vermitteln.
Im Gegensatz dazu beziehen sich die Daten in den Resistenztabellen auf Primärisolate, d.h. nur das
erste Isolat eines Patienten (mit der jeweiligen Fragestellung) geht in die Auswertung ein.
Dieser Bericht besteht bewusst vorwiegend aus Tabellen mit der Intention, sich anhand der aktuellen
Resistenzsituation im Vergleich zu den Ergebnissen der Vorjahre selbst ein Bild machen zu können.
Der Aufbau der Ergebnistabelle ist wie folgt:
Antibiotika Getestet %S %I %R %R Vorjahre
Getestete Antibiotika
Anzahl der Isolate
(zumeist Primärisolate)
Ergebnis „sensibel“ in Prozent
Ergebnis „intermediär“
in Prozent
Ergebnis resistent
in Prozent
Resistenzraten in den früheren
Berichten
Die interessierten Leser ersuchen wir um kritische Auseinandersetzung mit den dargestellten
Ergebnissen und Kontaktaufnahme mit dem Labor bei Auftreten von Fragen.
Alle konstruktiven Anregungen sind uns willkommen!
Für alle Mitarbeiter des Mikrobiologischen Laboratoriums
Leoben, im Mai 2012 DDr. Michael Gehrer / Dr. Kurt Prein / Theresia Fürpaß
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Zusammenstellung und für den Inhalt verantwortlich (2012©)
Dr. Kurt Prein
Pathologisches Institut im LKH Graz West
Göstinger Straße 22, A-8020 Graz
Tel: 0316/5466/4672
E-Mail: [email protected]
DDr. Michael Gehrer
Medizinische Universität Graz
Institut für Hygiene, Mikrobiologie und
Umweltmedizin
Universitätsplatz 4, A-8010 Graz
Tel. 0316/380-4375
E-mail: [email protected]
Theresia Fürpaß, Biomedizinische Analytikerin
Pathologisches Institut im LKH Leoben/Eisenerz
Vordernbergerstr. 42, A-8700 Leoben
Tel.: 03842/401-2416
E-Mail: [email protected]
Erreichbarkeit des Mikrobiologischen Labors:
Telefon Mikrob.
Labor: 03842/401-2416
Fax: Mikrob. Labor: 03842/401-2737
Öffnungszeiten:
Probenannahme:
Mo-Fr. 7:00 - 15:00
Mo-Fr. 7:00 – 13:00 (in dringenden Fällen bis 14:30)
Internet: www.lkh-leoben.at > Einrichtungen > Pathologie >
Mikrobiologisches Laboratorium
Intranet: http://intranet.leo.kages.at > Medizinisches > Abteilungen >
Pathologie > Mikrobiologie
Kurzsuche: 1002.1823
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Respirationstrakt Resistenzbericht 2011
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Infektionserreger im Respirationstrakt (inklusive Nasennebenhöhlen, Ohren und Augen)
Allgemeines
In diesem Kapitel werden Keime aus dem Respirationstrakt inklusive Nasennebenhöhlen, Ohren und
Augen behandelt. Im Jahr 2011 wurden von diesen Lokalisationen insgesamt 7084 Proben von 3998
Patienten untersucht. Die Keimverteilung bei diesen Entnahmeorten ist immer sehr heterogen, oftmals
werden mehrere Keime in einer Probe nachgewiesen. In der folgenden Tabelle werden daher nur die
häufigsten Erreger dieser Entnahmelokalisation aufgelistet ohne Aussage hinsichtlich ihrer
Pathogenität. Negative Proben (Kein Wachstum) wurden exkludiert.
Abbildung 4: Respiratorische Proben 2011, Verteilung der häufigsten nachgewiesenen Keime (Darstellung aller Keime mit mehr als 50 positiven Isolaten)
Das Grundproblem bei Proben aus dem Respirationstrakt ist die Mischung von Keimen der normalen
Standortflora des Mund-Rachenbereiches mit möglichen pathogenen Erregern.
Bei ungezielter Entnahme (z.B. Sputum) ist die richtige Entnahmetechnik und eine rasche
Verarbeitung (am besten innerhalb von 2 Stunden) von eminenter Bedeutung. Da dies in der
Praxis bei externen Zuweisern kaum durchführbar ist, empfehlen wir alternativ einen Abstrich
vom suspekten Sputumanteil (eitrig, blutig) zu gewinnen.
Am anderen Ende des Spektrums steht eine sehr gezielte Probenentnahme (z.B. BAL), welche
färberisch und quantitativ kulturell bearbeitet wird, inklusive Suche seltener Erreger wie
Legionella, auf Anfrage auch Nocardia und Actinomyces.
Anaerobe Bakterien werden in BAL oder Bronchialsekret nur bei Aspirationspneumonie und auf
Anfrage gesucht.
Die Suche nach Mykobakterien erfordert die Einsendung eines gesonderten Materials mit der
entsprechenden Fragestellung am Begleitschein.
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Streptococcus pyogenes (Streptokokken der Gruppe A)
Streptokokken der Gruppe A wurden im Jahr 2011 in 218 Proben nachgewiesen, in 101 Fällen
wurde ein Antibiogramm erstellt.
Die überwiegende Mehrzahl dieser Keime wurde aus Tonsillen- und Rachenabstrichen isoliert. In
dieser Lokalisation wird nur in Ausnahmefällen ein Antibiogramm erstellt (Penicillinallergie, Therapie
mit Makroliden), da noch keine Fälle von Penicillin- oder Cephalosporinresistenz bekannt sind.
Außerdem sind 10-20% der Normalbevölkerung asymptomatische Träger von Streptokokken der
Gruppe A, und nicht jeder Keimnachweis ist daher mit einer Infektion gleichzusetzen.
Bei Streptokokken der Gruppe A von allen anderen Entnahmeorten wird immer ein Antibiogramm
erstellt.
Die folgende Auswertung bezieht sich auf alle Keimnachweise mit Antibiogramm von allen
Lokalisationen.
Tabelle 1: Streptococcus Gruppe A 2011, alle Materialien, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009
%R
2007
%R
2005
%R
2004
%R
2003
%R
2002
Penicillin 100 100,00
Ampicillin 101 100,00
Cefotaxim 101 100,00
Erythromycin 100 93,00 7,00 9,9 3,5 3,3 7,4 8 11,6
Clindamycin 100 93,00 7,00 8 3,5 3,3 6,6 4 1,8
Tetracyclin 99 92,93 7,07 11,88 11,8 13 25,4 18,1 23,6
Imipenem 99 100,00
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Laut EUCAST gilt das Ergebnis „Penicillin empfindlich“ für alle ß-Lactam-Antibiotika (ausgenommen: Ticarcillin +/- ß-Lactamase-Inhibitor, Mecillinam, Cefixim, Ceftazidim).
Ciprofloxacin und Ofloxacin werden als nicht wirksam eingestuft.
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Streptokokken der Gruppe C und G
Das klinische Spektrum der Streptokokken der Gruppe C und G ist ähnlich dem der Streptococcus
pyogenes-Infektionen (mit Ausnahme von Scharlach und Rheumatischem Fieber).
Tabelle 2: Streptococcus Gruppe C 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R 2009
%R 2007
%R 2005
%R 2004
%R 2003
%R 2002
Penicillin 45 100
Ampicillin 45 100
Cefotaxim 45 100
Erythromycin 45 80 20 14,9 22 20 8,5 7 13,3
Clindamycin 45 86,67 13,33 17 16,7 13,3 8,5 7,1 6,7
Tetracyclin 45 86,67 13,33 19,6 23,8 6,7 21,3 11,3 12,5
Imipenem 45 100
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Tabelle 3: Streptococcus Gruppe G 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin 27 100
Ampicillin 29 100
Cefotaxim 29 100
Erythromycin 27 85,19 14,81 14,71 7,7 20,7 14,3 3,8 0
Clindamycin 27 85,19 14,81 14,71 10,3 17,2 8,8 3,8 0
Tetracyclin 27 62,96 37,04 45,45 43,6 37,9 51,4 43,3 41,7
Imipenem 27 100
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Die Resistenzproblematik bezüglich Makrolide, Clindamycin und Tetrazyklin ist auch bei anderen ß-
hämolysierenden Streptokokken nachweisbar.
Laut EUCAST gilt das Ergebnis „Penicillin empfindlich“ für alle ß-Lactam-Antibiotika (ausgenommen: Ticarcillin +/- ß-Lactamase-Inhibitor, Mecillinam, Cefixim, Ceftazidim).
Ciprofloxacin und Ofloxacin werden als nicht wirksam eingestuft.
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Streptococcus pneumoniae
109 Isolate von 96 Patienten stammen überwiegend aus dem Respirationstrakt (inklusive
Nasennebenhöhlen, Ohren und Augen), nicht jeder Keimnachweis ist mit einer Infektion assoziiert.
Bei 5 Patienten wurden Pneumokokken in der Blutkultur, bei 1 Patienten in der Liquorkultur
nachgewiesen.
Tabelle 4: Streptococcus pneumoniae 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 89 91.12 8,88 1,01 intermed
10,5 intermed
4 intermed
4,3 Intermed
7,4 Intermed
4,6 Intermed
4
Cefotaxim 91 97,8 2,2
Erythromycin 93 86,02 13,98 11,5 11 8,6 7,5 10,6 8,3
Clindamycin 93 90,32 9,68 7,2 5,1 5,4 3,2 8,6 4,2
Tetracyclin 93 89,25 10,75 7,2 5,1 8,3 5,3 8,3 11,1
Imipenem 92 98,91 1,09
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Ein Ansteigen der Resistenzrate bei Pneumokokken in verschiedenen europäischen Ländern ist
beschrieben. Um die Resistenzentwicklung besser verfolgen zu können, wird seit Beginn 2004 im
Mikrobiolog. Labor Leoben bei jedem isolierten Streptococcus pneumoniae die Minimale
Hemmkonzentration (MHK) von Penicillin mit einem E-Test überprüft.
Laut EUCAST werden einige ß-Lactam-Antibiotika als nicht wirksam eingestuft (Cefadroxil,
Cefalexin, Cefazolin, Cefixim, Ceftazidim, Ceftibuten).
Auch Ciprofloxacin und Ofloxacin zeigen keine gute Wirksamkeit, Wildtypen (ohne zusätzlich
erworbene Resistenz) werden automatisch als intermediär interpretiert.
Abbildung 5: MHK-Verteilung bei Pneumokokken
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Im Jahr 2011 wurden in unserem Einsendegut 8 Isolate mit verminderter Empfindlichkeit gegenüber
Penicillin dokumentiert:
Tabelle 5: Pneumokokkenisolate mit verminderter Penicillinempfindlichkeit
Patient minimale Hemmkonzentration zusätzliche Resistenzen
51 jähriger Mann, Nasenabstrich MHK 0,19 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,
Tetracyklin
91 jährige Frau, Trachealsekret MHK 0,5 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,
Tetracyklin
53 jähriger Mann, Unterarm MHK 0,19 µg/ml Erythromycin
17 jährige Frau, Nasenabstrich MHK 1 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,
Tetracyklin
64 jährige Frau, Sputum MHK 0,125 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,
Tetracyklin
71 jähriger Mann, Nasenabstrich MHK 3 µg/ml
Erythromycin, Clindamycin, Tetracyklin,
Trimethoprim/Sulfamethoxazol, Cefotaxim intermediär, Ofloxacin intermediär
57 jähriger Mann, Pharynxabstrich MHK 0,75 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,
Tetracyklin
76 jährige Frau, Sputum MHK 0,094 µg/ml Erythromycin, Clindamycin,
Tetracyklin, Imipenem
Im Jahr 2011 wurde ein Penicillin-resistenter Stamm mit einer MHK von 3 aus einem
Nasenabstrich bei der klinischen Diagnose Pansinusitis nachgewiesen. Das Isolat stammte aus
dem niedergelassenen Bereich.
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Haemophilus influenzae
Haemophilus influenzae wurde in 168 Proben von 159 Patienten isoliert, der Erreger wird teilweise
der normalen Flora des Respirationstraktes zugeordnet, er kann aber auch Ursache einer Infektion
sein. Die Hauptmasse unserer isolierten Stämme stammt aus dem Respirationstrakt, selten aus anderen
Lokalisationen.
Tabelle 6: Haemophilus influenzae 2011, alle Materialien, allen Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Ampicillin 175 82,86 17,14 5,02 6,9 2,5 2,7 4,6 2,2
Cefuroxim-Axetil 36 100
Cefuroxim-Sodium 139 98,56 1,44
Ceftriaxon 171 100
Tetracyclin 175 98,86 1,14 0,9 0,5 0,8
Trimethoprim/Sulfonamid 73 79,45 20,55 20,31 12,6 7,7 --- --- ---
Ciprofloxacin 34 100
Ofloxacin 45 100
Amoxicillin/Clavulansäure 144 95,83 4,17
Moxifloxacin 141 100 Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Die Wirksamkeit von Makroliden gegen H. influenzae wird als nicht ausreichend eingeschätzt
(Wildtyp zeigt intermediäres Verhalten) , und das Ergebnis von Erythromycin gilt auch für
Azithromycin, Clarithromycin und Roxithromycin.
Außerdem werden Cefalosporine wie Cefaclor, Cefalexin, Cefatolin und Ceftazidim als nicht wirksam
eingestuft.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Respirationstrakt Resistenzbericht 2011
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Moraxella catarrhalis
In 26 Proben von 24 Patienten wurde Moraxella
catarrhalis nachgewiesen. Sie ist Bestandteil der normalen
Rachenflora, kann aber auch zu Infektionen des
Respirationstraktes führen.
Die Resistenztestung wurde mit E-Tests (Bio Merieux)
durchgeführt.
Abbildung 6
Grampräparat von Moraxella
catarrhalis im Sputum bei
Pneumonie
Tabelle 7: Moraxella catarrhalis 20011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009
Erythromycin 24 75 25 Intermed: 8,3
Ciprofloxacin 24 91,67 8,33 2,8
Doxycyclin 13 92,31 7,69 ---
Amoxicillin/Clavulansäure 22 95,45 4,55 ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Der stark erhöhte Prozentsatz an Resistenz gegen Erythromycin dürfte sich aus den stark verminderten
Breakpoints von EUCAST im Vergleich zu CLSI ergeben.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Respirationstrakt Resistenzbericht 2011
Seite 16 von 64
Pseudomonas aeruginosa (Ohr)
Pseudomonas aeruginosa ist ein Wasserkeim und wird häufig in den äußeren Gehörgängen als
Krankheitserreger nachgewiesen. Eine Häufung von Infektionen ist vor allem in den Sommermonaten
zu beobachten (Bäderbesuche). Oft erhalten die Patienten Augmentin zur Behandlung einer Otitis
media. Dieses Antibiotikum ist gegen Pseudomonas aber unwirksam. Eine natürliche Resistenz
besteht weiters auf Penicillin, Aminopenicilline, Ceph 1 und Ceph 2, Trim./Sulf.
Tabelle 8: Pseudomonas aeruginosa 2011, Ohr, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Piperacillin/Tazobactam 73 98,63 1,37 0,7 1,3 0,6
Ceftazidim 105 100 0,7 0,6 1,2
Cefepim 105 97,14 2,86 --- --- --- --- --- ---
Imipenem 105 95,24 4,76 2,9 3,1 1,6 5,5 0,5 1,9
Meropenem 105 94,29 1,9 3,81 2,9 1,9 --- --- ---
Gentamicin 105 91,43 8,57 2,9 1,3 6,4 4,8 4,8 8,3
Amikacin 104 93,27 2,88 3,85 2,9 2,5 2,1 2,4 3,3 2,6
Ciprofloxacin 105 94,29 0,95 4,76 2,2 2,5 3,2 1,2 0,5 2,6
Colistin 39 92,31 7,69 1,7 3,6 --- --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Hauptproblem bei der Pseudomonas-Therapie ist die eingeschränkte Verfügbarkeit von oralen
Antibiotika. Die weiterhin niedrige Resistenzrate bei Ciprofloxacin ist daher erfreulich, obwohl doch
eine tendenzielle Resistenzzunahme zu beobachten ist.
Ebenso sollte der Aufwärtstrend der Resistenz gegenüber Carbapenemen nicht übersehen werden.
Pseudomonas aeruginosa (tiefer Respirationstrakt)
Tabelle 9: Pseudomonas aeruginosa 2011, tiefer Respir. Trakt, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Piperacillin/Tazobactam 90 83,33 16,67 8,6 7,2 13,4 11,4 6,2 8
Ceftazidim 99 82,83 2,02 15,15 9,4 5,1 8,3 4,3 4,8 10
Cefepim 99 93,94 6,06 --- --- --- --- --- ---
Imipenem 99 80,81 1,01 18,18 9,5 22,5 19,6 19,7 15,6 13,6
Meropenem 99 83,84 2,02 14,14 11,2 6,5 13,7 --- --- ---
Gentamicin 99 88,89 1,01 10,1 4,4 4,3 15,9 12,7 14,4 9,1
Amikacin 98 89,8 5,1 5,1 5,2 1,4 4,5 6,3 10,3 3,9
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Wie bereits oben angeführt, ist ein Ansteigen der Resistenz gegnüber Carbapenemen zu beobachten.
Ein Teil dieser Zunahme ist allerdings auch auf die durch EUCAST veränderte Resistenz-
Interpretation zurückzuführen.
Grundsätzlich ist zu bemerken, dass Pseudomonas aeruginosa bei längerer Therapie gegen alle
Antibiotika resistent werden kann. Eine konsekutive Resistenztestung sollte deshalb bei einer
therapiewürdigen Infektion unbedingt durchgeführt werden.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Respirationstrakt Resistenzbericht 2011
Seite 17 von 64
Staphylococcus aureus
Tabelle 10: Staphylococcus aureus 2011, Respirationstrakt, Krankenhaus (stat. und amb.)
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin 381 25,72 74,28 66,5 71 80 72,2 75 74,4
Isoxazolylpenicillin 381 95,8 4,2 3 3,9 16 16,6 14,7 13,3
Amoxicillin/Clavulansäure 381 95,8 4,2 3 3,9 16 16,6 14,3 --
Cefazolin 60 95 5 3 3,9 16 16,6 14,7 --
Gentamicin 381 98,43 1,57 6,9 7,1 22 20,1 25,3 18,7
Tetracyclin 216 98,15 1,85 2,5 1,6 0,7 2,8 2,9 --
Fosfomycin 216 99,54 0,46 0,3 1,6 2,5 3,5 3,8 3,9
Fusidinsäure 381 99,48 0,52 0,3 0,5 1,4 0,3 0,8 0,6
Erythromycin 381 84,78 15,22 12,7 13 24 33 26,2 27,5
Clindamycin 381 85,56 0,26 14,17 12,5 13 22 29,6 17,5 15,3
Ciprofloxacin 381 94,23 5,77 4,7 6,3 22 19,7 26,5 --
Rifampicin 381 100 0,7 0,4 0,6
Vancomycin 195 100
Linezolid 359 99,72 0,28
Mupirocin 279 100 2,5 6,5 15,6
Sulf/Trimethoprim 230 99,13 0,87 0,4 0,5 3
Tigecyclin 358 100
Teicoplanin 195 100
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Die meisten Staph aureus-Stämme sind Penicillinasebildner und somit resistent gegen nicht-
penicillinase-stabile Penicilline. Eine Wirksamkeit von Amoxicillin/Clavulansäure,
Cephalosporinen und Carbapenemen ist bei diesen Keimen gegeben.
3% der Isolate aus dem Respirationstrakt sind schon im Primärisolat resistent gegen
Isoxazolylpenicillin und sind als methicillinresistente Staph aureus-Stämme (MRSA) zu werten.
Die niedrige MRSA-Rate der letzten Jahre bleibt unverändert bestehen.
Bemerkenswert ist die 100%ige Empfindlichkeit auf Mupirocin (100% sensibel)
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Respirationstrakt Resistenzbericht 2011
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Tabelle 11: Staphylococcus aureus 2011, Respirationstrakt, Niedergelassene
Antibiotika getestet %S %I %R %R 2009
%R 2007
%R 2005
%R 2004
%R 2003
%R 2002
Penicillin 99 29,29 70,71 71,4 67 78 63,8 71,1 73,6
Isoxazolylpenicillin 98 96,94 3,06 1,4 0,7 1 2,3 0,8
Amoxicillin/Clavulansäure 98 96,94 3,06 1,4 0,7 1 2,3
Gentamicin 98 100 1,4 3 5 3,8 4,8 4,8
Tetracyclin 63 96,83 3,17 5 3 4 3,8 6,1 4,3
Fosfomycin 62 100 1,7
Fusidinsäure 98 98,98 1,02
Erythromycin 99 89,9 10,1 12,1 13 14 13,1 10,4 18,4
Clindamycin 99 89,9 1,01 9,09 11,4 12 10 11,5 1,7 2
Ciprofloxacin 98 96,94 3,06 0,7 1,5 5 7 6,8 7,5
Rifampicin 98 100
Vancomycin 48 100
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Nicht jeder Nachweis von MRSA bedeutet zwangsläufig eine Infektion. Häufig handelt es sich nur um
eine Kolonisation von Haut, Nasen-Rachen-Raum und anderen Lokalisationen. Diese Keime können
aber die Quelle einer zukünftigen Infektion sein.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Respirationstrakt Resistenzbericht 2011
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Klebsiella sp. (tiefer Respirationstrakt)
Tabelle 12: Klebsiella sp. 2011, tiefer Respirationstrakt, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Amoxicillin/Clavulansäure 87 87,36 12,64 10,8 10,1 12,4 5 4,1 10,1
Piperacillin/Tazobactam 86 84,88 5,81 9,3 6,9 10,2 6,2 2,9 1,6 7,1
Cefuroxim 71 85,92 14,08 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 87 96,55 1,15 2,3 0,8 3,7 6,3 2,2 2
Ceftazidim 74 94,59 2,7 2,7 0,8 3,7 4,5 2,4 --- ---
Imipenem 87 100
Meropenem 87 100 --- --- ---
Gentamicin 87 98,85 1,15 2,3 0,9 2,7 0,8
Trimethoprim/Sulfonamid 76 92,11 7,89 4,6 3,7 TMP 16,8
TMP 12,3
TMP 9.8
TMP 12,1
Ciprofloxacin 87 83,91 3,45 12,64 3,1 1,9 8 4,3 2,4 1,9
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Klebsiella ist ein wesentlicher Pneumonieerreger.
Betalaktamasebildung ist der wichtigste Resistenzmechanismus. Multiresistenzen bestehen bei ESBL
(extended spectrum Betalaktamase-), AmpC-Bildung (Resistenz gegen Amoxicillin plus
Clavulansäure, Cephalosporine I, II und III und Cefoxitin) und Carbapenemasebildung (Resistenz
gegen alle ß-Lactam-Antibiotika, also auch Carbapeneme).
Besondere Erreger im Respirationstrakt
Legionella pneumophila ist ein bedeutsamer Pneumonieerreger. Die wichtigen Serogruppen 1 und 6
können auf sehr einfache Weise mit einem immunchromatographischen Schnelltest aus dem Harn
diagnostiziert werden, die Anzucht der Erreger auf Nährboden erfordert Selektivagar und spezielle
Bebrütungsbedingungen.
Im Jahr 2011 wurden im Mikrobiologischen Labor keine Legionella-Isolate gefunden..
Von 57 serologischen Untersuchungen des Harn auf Legionella-AG reagierten 2 Proben ( von
2 Patienten) positiv. Bei den selben Patienten konnte Legionella aus Materialien vom
Respirationstrakt nicht nachgewiesen werden.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Respirationstrakt Resistenzbericht 2011
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Mycobacterium tuberculosis
Im Mikrobiologischen Labor
Leoben wird Tuberkulosediagnostik
mit
ZN-Färbung und kultureller
Anzucht von Mykobakterien
durchgeführt.
Positive Kulturen werden zur PCR-
Identifizierung und zur
Resistenztestung an das Institut für
Krankenhaushygiene und
Mikrobiologie in Graz geschickt.
In der Abbildung 7 ist graphisch die
Zahl der Primärisolate/Jahr von
Mycobacterium tuberculosis
complex vom Jahr 1996 bis 2011
dargestellt.
Abbildung 7: Tb-Diagnostik 1996 – 2011
Im Jahr 2011 wurden 929 Proben mit der Fragestellung ZN-Färbung und/oder Tb-Kultur von 354
Patienten untersucht.
Bei 19 Patienten konnten Tuberkuloseerreger (Mycobacterium tuberculosis complex)
nachgewiesen werden.
Tabelle 13: Materialverteilung bei pos. Tb-Befunden 2011
Keim-Name Material Primärisolat
Mycobacterium tuberculosis complex
Lunge und Pleura 13
Lymphknoten 3
Knochen 1
weibl.Genitale 1
GI-Trakt 1
Im Jahr 2011 wurden bei 24 Patienten sogenannte nicht tuberkulöse Mykobakterien
(Mycobacterium avium und avium complex 6x, Mycobacterium fortuitum 12x, Mycobacterium
gordonae 5x, Mycobacterium intracellulare 1x, Mycobacterium kansasii 1x, Mycobacterium
malmoense 1x) isoliert.
Sie stammten aus den Atemwegen.
Tabelle 14: Mycobacterium tuberculosis complex 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Ethambutol 19 100 12,5
Isoniacid 19 100 10 9,5 12,5 4 4,5 4
Pyrazinamid 19 100 4,8 12,5 4,5
Rifampicin 19 100 10 6,3 4
Streptomycin 19 100 9,5 6,3 4
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Mikrobiologisches Labortorium Leoben Gastrointestinaltrakt Resistenzbericht 2011
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Infektionserreger im Gastrointestinaltrakt
6974 Stuhlproben (für bakterielle Untersuchung) von 3568 Patienten wurden untersucht.
Abbildung 8: potentiell pathogene bakterielle Stuhlkeime 2011
Die Vorgangsweise hinsichtlich Meldepflicht ist im Steirischen Seuchenplan festgelegt (siehe
http://www.verwaltung.steiermark.at/cms/ziel/2651878/DE/)
Die bedeutsamsten bakteriellen Durchfallserreger sind Salmonella und Campylobacter.
Die folgende Abbildung veranschaulicht die Häufigkeiten aller untersuchten Isolate im Verlauf der
Jahre.
Abbildung 9: Häufigkeit Salmonellen und Campylobacter
Mikrobiologisches Labortorium Leoben Gastrointestinaltrakt Resistenzbericht 2011
Seite 22 von 64
Salmonella sp.
2011 wurden 49 Isolate bei 35 Patienten nachgewiesen. Die Anzahl der Primärisolate ist somit
ähnlich wie 2009
Tabelle 15: Salmonella sp. 2011, Stuhl, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Ampicillin 36 55,56 44,44 6,3 11,4 6,4 5,1 2,6 10,1
Cefotaxim 37 100
Trimethoprim/Sulfonamid 37 91,89 8,11 2,9 1,6 1,4
Ciprofloxacin 37 100 2,1
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Der massive Anstieg der Resistenz gegenüber Ampicillin ist mit hoher Wahrscheinlichkeit auf die
veränderte MHK-Bewertung gemäß EUCAST zurückzuführen.
Campylobacter sp.
2011 wurden 186 Isolate bei 143 Patienten nachgewiesen. Die Anzahl der Primärisolate ist somit
ähnlich wie 2009.
Tabelle 16: Campylobacter 2011, Stuhl, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Tetracyclin 147 70,75 0,68 28,57 24,8 19 19,5 21,9 23,5 16,5
Ciprofloxacin 146 35,62 0,68 63,7 53,1 53 35,5 37,4 31,7 43,1
Nalidixinsäure 146 38,36 0,68 60,96 56,6 53 38,5 38,1 32,2 46,5
Erythromycin 146 99,32 0,68 0,7 1,7 1,3 0,5
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Shigella sp.
2011 wurde keine Shigella gefunden.
Yersinia sp.
4 Isolate von Yersina enterocolitica bei 4
Patienten wurden 2011 im Stuhl nachgewiesen,
eine routinemäßige Resistenztestung wurde nicht
durchgeführt, weil noch keine Resistenzen gegen
die normalerweise wirksamen Antibiotika
aufgetreten sind. Alle Keime werden zum
Yersinia-Referenzzentrum zur Serotypisierung
geschickt.
Abbildung 10:
Yersinia enterocolitica auf Yersinia C.I.N.-
Agar von Bio Merieux
Mikrobiologisches Labortorium Leoben Gastrointestinaltrakt Resistenzbericht 2011
Seite 23 von 64
EHEC
Seit Beginn 2005 werden im Mikrobiologischen Labor Leoben bei Stuhlproben mit der
Fragestellung EHEC, bei Verdacht auf HUS oder TTP, bei blutigen Stuhlproben, bei Durchfall
nach Auslandsaufenthalt Verotoxin-bildende Escherichia coli-Stämme gesucht. Bei einem
positiven Ergebnis wird das Untersuchungsmaterial für die weitere Abklärung an die
Referenzzentrale in Graz gesandt.
Bei der Diagnose HUS oder TTP soll vom behandelnden Arzt unabhängig vom Screening eine
Stuhlprobe und eine Serumprobe für einen Antikörpernachweis direkt an die Referenzzentrale in
Graz gesandt werden.
Von einer antibiotischen Therapie ist wegen der möglichen Toxinfreisetzung und der Entwicklung
eines hämolytisch urämischen Syndroms (HUS) abzuraten.
Im Jahr 2011 wurden in unserem Einsendematerial 2 Verotoxin-bildende E. coli (22-jährige
Frau, 72-jähriger Mann) in 175 Proben von 171 Patienten gefunden.
Aeromonas hydrophila
27 Isolate vom potenentiellen Durchfalleserreger Aeromonas hydrophila wurden bei 20 Patienten
nachgewiesen.
Clostridium difficile
Im Jahr 2011 wurden 1939 Proben von 1532 Patienten untersucht. In 139 Proben von 103 Patienten
wurden toxinbildende Clostridium difficile Stämme gefunden (Toxin A und/oder Toxin B).
Die übliche Therapie bei Clostrium difficile Colitis sind Metronidazol bzw. Vancomycin p. o..
Eine Resistenztestung ist nicht notwendig und wird nur auf ausdrücklichen Wunsch des Einsenders
durchgeführt.
Bedingt durch die Fähigkeit des Erregers zur Sporenbildung, sind gehäufte Clostridium difficile –
Infektionen eine große Herausforderung an die Krankenhaushygiene.
Mikrobiologisches Labortorium Leoben Gastrointestinaltrakt Resistenzbericht 2011
Seite 24 von 64
Helicobacter pylori
Serologisch wurden 18 Stuhlroben von 18
Patienten auf HP-AG untersucht. Alle
Proben waren negativ.
43 Isolate von Helicobacter pylori wurden
aus den Magenbiopsien von 32 Patienten
gezüchtet.
Proben auf Helicobacter pylori erfordern eine
Einsendung in einem speziellen
Transportmedium (Portagerm pylori).
Einsenderichtlinien siehe Homepage des LKH
Leoben (www.lkh-leoben.at > Abteilungen >
Pathologisches Institut > Mikrobiologisches
Labor > Einsenderichtlinien)
Abbildung 11: Helicobacter pylori,
Grampräparat von einer Magenbiopsie
Tabelle 17: Helicobacter pylori 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009
Amoxicillin 22 95,45 4,55
Clarithromycin 29 10,34 3,45 86,21 85
Levofloxacin 29 82,76 17,24 ---
Metronidazol 30 40 60 70
Rifampicin 28 89,29 10,71 6,7
Tetracyclin 29 100
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Rotavirus:
Bedeutsame virale Durchfallserreger sind Rotaviren. Im Jahr 2011 wurden 1527 Proben von 1388
Patienten serologisch untersucht, bei 59 Proben von 59 Patienten konnte ein positiver Rotavirus-
Nachweis geführt werden.
Im Jahr 2009 wurden 1468 Proben von 1337 Patienten untersucht. 39 Proben von 39 Patienten waren
positiv.
Im Jahr 2008 wurden 1779 Proben von 1624 Patienten serologisch untersucht, dabei waren 111
Proben von 109 Patienten positiv.
Die Hauptmasse der untersuchten Proben stammt von der Kinderabteilung des LKH Leoben. Die
deutliche Verminderung der notwendigen Untersuchungen und der positiven Fälle ist sicherlich als
Erfolg der Rotavirus-Schluckimpung zu interpretierten.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Harnwege Resistenzbericht 2011
Seite 25 von 64
Infektionserreger der Harnwege
Allgemeines
Im Jahr 2011 wurden aus Materialien des Harntraktes 6443 Befunde von 4130 Patienten erstellt.
Ein Teil der Einsendungen erfolgte als bereits vorbebrütete Objektträgerkultur (Uricult), welche sich
nicht zur Untersuchung auf Gonokokken, Anaerobier, div. Streptokokken und
antibiotikageschädigte Keime eignet. Alternativ gibt es daher die Möglichkeit der Untersuchung von
Nativharn (übersandt in einem Stabilisatorröhrchen oder – wenn die Transportzeit entspechend kurz ist
- in einem sterilen Röhrchen).
Abbildung 12: Harnproben 2011, Verteilung der am häufigsten nachgewiesenen Keime
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Harnwege Resistenzbericht 2011
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Escherichia coli
Escherichia coli ist der häufigste im Harn nachgewiesene Keim. In den folgenden Tabellen werden
Isolate aus dem Krankenhaus (stationär und ambulant) und aus dem niedergelassenen Bereich
(Fachärzte, Praktiker) gegenübergestellt.
Tabelle 18: Escherichia coli 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Ampicillin 1299 54 0,1 46 43,3 39 31,1 30,1 26,5 29,4
Amoxicillin/Clavulansäure 1299 83 1,1 16 9,4 9,5 5,8 4,3 4,7 4
Piperacillin/Tazobactam 1211 92 2,2 5,9 6,5 5,9 0,9 0,3 0,6 0,4
Cefuroxim 1077 89 0,1 11 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 1294 92 0,2 8 6,3 5,9 0,8 0,1 0,1
Gentamicin 1293 95 0,8 4,7 6,3 5,4 4,2 3,5 2,2 1,3
Trimethoprim 1301 71 0,1 29 30,5 27,5 21,8 17,7 16,7 17,3
Ciprofloxacin 1300 74 0,5 26 23,7 22,1 12,7 9,5 6,9 5
Nitrofurantoin 1252 97 0,4 2,3 1 1,1 0,7 0,5 0,7 1,3
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Tabelle 19: Escherichia coli 2011 Harn, Niedergelassene Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Ampicillin 292 57,53 42,47 41 35,2 34,7 36,4 26,5 25,7
Amoxicillin/Clavulansre 292 82,19 1,37 16,44 10 6,6 6,3 6,2 1,4 3,8
Piperacillin/Tazobactam 242 91,74 3,31 4,96 9 3,6 0,3 0,6 0,9
Cefuroxim 237 86,08 13,92 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 292 90,41 9,59 8,7 2,7 0,3
Gentamicin 292 94,18 5,82 3,9 4,3 2,4 3,3 1,8 1,2
Trimethoprim 291 69,07 30,93 29,5 28,8 22,9 22,2 20,5 17,7
Ciprofloxacin 292 77,74 1,03 21,23 20 17,3 10,1 12,7 10,1 6,2
Nitrofurantoin 280 97,14 0,71 2,14 1,9 0,9 0,3 0,3 0,4 1,5
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Die tendenzielle Verschlechterung der Resistenzsituation ist vor allem auf das zahlenmäßig vermehrte
Auftreten von extended spectrum Betalaktamase bildenden Escherichia coli (ESBL-Coli) im Harn
zurückzuführen. Die typische Empfindlichkeit von ESBL-Coli ist im Kapitel „Multiresistente Erreger
- Enterobakterien und Breitspektrumbetalaktamasen“ dargestellt.
Ciprofloxacinresistenz bei E.coli im Harn im Detail:
Ciprofloxacin gehört zur 1. Wahl beim schweren (komplizierten) Harnwegsinfekt und bei Prostatitis.
Interessant sind die Ciprofloxacin-Resistenzraten verschiedener Einsendergruppen.
Über die Jahre hin kann man in allen Bereichen einen kontinuierlichen Anstieg erkennen.
Der Bereich Krankenhaus ambulant (entspricht in erster Linie der urologischen Ambulanz
Leoben) hat die Entwicklung vorweggenommen (Hinweis für selektioniertes Krankengut mit
häufiger Antibiotikatherapie).
Ciprofloxacin als ungezielte Primärtherapie ist zunehmend problematisch.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Harnwege Resistenzbericht 2011
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Tabelle 20: Ciprofloxacin-Resistenz 1996 bis 2011 im Detail, Harn
Zuweiser getestet %S %I %R %R %R %R %R %R %R %R %R
2011 2009 2007 2005 2004 2003 2002 1999 1996
Krankenhaus gesamt 1639 73,4 0,43
26,17 23,7 22,1 12,7 9,5 6,9 5 5,5 2
Niedergelassene 292 77,74 1,03 21,23 20 17,3 10,1 12,7 10,1 6,2 2,3 5,3
Krankenhaus ambulant 370 73,24 0,27
26,49 26,2 23,9 15,7 13,8 13,6 7,7 8,7 3,2
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Abbildung 13: Ciprofloxacinresistenz von E.coli im Harn
Der Trend einer zunehmenden Resistenzentwicklung von E.coli gegen Ciprofloxacin ist ungebrochen,
vor allem gleicht die Häufigkeit im LKH gesamt der Häufigkeit in der Ambulanz.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Harnwege Resistenzbericht 2011
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Proteus-Morganella-Gruppe
Tabelle 21: Proteus-Morganella-Gruppe 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Ampicillin 360 44,72 55,28 50,5 56,5 54,7 58 52,3 38,2
Amoxicillin/Clavulansre 363 72,73 0,28 27 19,4 18,8 21,3 20,4 21,1 10,1
Piperacillin/Tazobactam 309 96,76 1,29 1,94 2 1
Cefuroxim 260 86,15 0,38 13,46 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 358 96,65 1,12 2,23 2 1,6 1,7 1,9 0,8 1,1
Gentamicin 357 81,23 0,56 18,21 16 13,7 12,2 14,9 8,9 12,3
Trimethoprim 357 52,66 1,12 46,22 55 47,8 55,9 49,8 43,9 47,8
Ciprofloxacin 358 69,55 3,35 27,09 20,8 21,1 23,8 23,8 15,2 24,6
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Tabelle 22: Proteus-Morganella-Gruppe 2011, Harn, Niedergelassene
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Aminopenicilline 41 51,22 48,78 57,9 35 44 67,3 31,1 40,5
Amoxicillin/Clavulansre 41 78,05 2,44 19,51 28,2 10 20 16,3 6,7 21,6
Piperacillin/Tazobactam 28 96,43 3,57 5,3 5,9
Cefuroxim 33 84,85 15,15 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 41 95,12 2,44 2,44 2,6 4
Gentamicin 41 87,8 12,2 15,4 16 6,1 11,1 2,7
Trimethoprim 40 67,5 2,5 30 56,4 55 45,5 44,9 28,9 46
Ciprofloxacin 41 80,49 7,32 12,2 20,5 12,5 12 18,4 13,3 10,8
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Detailergebnisse für
Proteus mirabilis
Tabelle 23: Proteus mirabilis 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009
Ampicillin 268 56,34 43,66 33,3
Amoxicillin/Clavulansäure 269 85,13 0,37 14,5 1,5
Piperacillin/Tazobactam 231 98,27 0,87 0,87
Cefuroxim 216 95,83 0,46 3,7 ---
Cefotaxim 268 98,13 1,12 0,75
Gentamicin 268 80,97 0,75 18,28 15,7
Trimethoprim 267 49,81 0,37 49,81 60,5
Ciprofloxacin 268 65,3 4,48 30,22 19,8
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Tabelle 24: Proteus mirabilis 2011, Harn, Niedergelassene
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009
Ampicillin 31 67,74 32,26 40,7
Amoxicillin/Clavulansäure 31 90,32 3,23 6,45 10,7
Piperacillin/Tazobactam 21 100 3,6
Cefuroxim 29 96,55 3,45 ---
Cefotaxim 31 100 3,6
Gentamicin 31 87,1 12,9 21,4
Trimethoprim 30 66,67 3,33 30 53,6
Ciprofloxacin 31 77,42 9,68 12,9 17,9
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
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Klebsiella sp.
Tabelle 25: Klebsiella sp. 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Ampicillin 294 100 100 100 100 100 100 100
Amoxicillin/Clavulansäure 300 82 1 17 7,7 12,1 9,3 11,5 10,8 6,9
Piperacillin/Tazobactam 295 87,8 2,03 10,17 5,2 6,5 5,1 3,9 4,4
Cefuroxim 249 84,34 0,8 14,86
Cefotaxim 298 93,96 1,01 5,03 0,9 2,6 4,2 1,7
Gentamicin 296 94,93 5,07 0,4 0,5 0,6 0,5
Trimethoprim 296 73,31 1,69 25 16,4 17,3 27,6 13,8 8,4 15,9
Ciprofloxacin 295 80,34 1,69 17,97 6,4 7,3 14 5,5 3 8,2
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Abbildung 14:
Grampräparat von Klebsiella pneumoniae im Harn
Tabelle 26: Klebsiella sp. 2011, Harn, Niedergelassene
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Ampicillin 57 100 100 100 100 100 100 100
Amoxicillin/Clavulansre 57 89,47 10,53 9,8 9,8 7,7 7,1 11,1 5,7
Piperacillin/Tazobactam 54 92,59 1,85 5,56 9,8 2,4 2,6 2,8 0
Cefuroxim 53 84,91 15,09 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 57 94,74 5,26 9,8 2,4 3,4
Gentamicin 57 94,74 5,26 2,4 2,6 2,8 8,6
Trimethoprim 56 82,14 17,86 24,4 15 28,2 14,3 16,7 25,7
Ciprofloxacin 57 84,21 3,51 12,28 17,1 4,9 15,4 3,6 13,9 11,4
Nitrofurantoin --- 19,1 12,8 10,5 7,1 5,6 5,7
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Pseudomonas aeruginosa
Tabelle 27: Pseudomonas aeruginosa 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)
Antibiotika getestet %S %I %R %R 2009
%R 2007
%R 2005
%R 2004
%R 2003
%R 2002
Piperacillin/Tazobactam 247 89,07 10,93 7,4 9 7,1 9,1 9,3 11,1
Ceftazidim 248 92,34 0,4 7,26 4,2 3,5 3,3 4,5 3,1 6
Cefepime 250 94,8 5,2 3,4 1,7 1,9 2,7 3,9
Gentamicin 254 89,76 10,24 6,3 9,5 9,4 18,1 19,2 9,9
Amikacin 248 93,15 4,03 2,82 2,8 2,3 3,1 5,4 6 5,9
Imipenem 249 89,56 0,8 9,64 10 11,1 6,3 8,1 18,2 5,8
Meropenem 252 88,49 2,78 8,73 10,1 7,8 6,4 --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Tabelle 28: Pseudomonas aeruginosa 2011, Harn, Niedergelassene
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Piperacillin/Tazobactam 20 90 10 4,4 3,8
Ceftazidim 20 90 10 4,4 12,5
Cefepime 20 95 5
Gentamicin 20 90 10 3,3 23,1 15,8
Amikacin 20 85 10 5 5,3 15 17,7
Imipenem 20 90 10 12,5 5 11,8
Meropenem 20 90 5 5 5 --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Enterobacter-Gruppe
Tabelle 29: Enterobacter Gruppe 2011, Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Piperacillin/Tazobactam 84 75 1,19 23,81 13 10,8 4,3 5,3 8,8 0
Cefuroxim 34 38,24 2,94 58,82 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 85 69,41 1,18 29,41 23,4 23,5 16,2 20,4 20,9 10,4
Gentamicin 82 97,56 2,44 4 3,4 7,4 3,3 2,6
Trimethoprim 82 89,02 10,98 9,3 15,7 17,9 13,2 15,4 11,7
Ciprofloxacin 82 87,8 1,22 10,98 7,8 14 15,4 12,9 13,2 5,2
Nitrofurantoin 16 56,25 18,75 25 13,2 23,8 15,5 12,9 17,2 13,2
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Bei Behandlung mit einem Cephalosporin der 3. Generation besteht die Gefahr der Induktion einer
Resistenz gegen Cephalosporine der 2. und 3. Generation.
Das in vitro Ergebnis „empfindlich“ bei Piperacillin/Tazobactam lässt nicht sicher auf eine
Wirksamkeit der Substanz in vivo schliessen.
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Staphylococcus aureus
Tabelle 30: Staphylococcus aureus 2011 Harn, Krankenhaus (stat. und amb.)
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin 86 25,58 74,42 69,8 70,3 82,1 89,5 75 75
Ampicillin 85 27,06 72,94 67,4 70,3 83,8 81,3 71,2 76,4
Piperacillin/Tazobactam 85 85,88 14,12 2,3 10,8 --- --- --- ---
Isoxazolylpenicillin 86 86,05 13,95 2,3 10,8 14,3 18,4 23,2 7,3
Gentamicin 86 86,05 13,95 30,2 27 43,6 44,7 42,4 32,1
Trimethoprim 85 91,76 8,24 9,3 10,8 15,1 8,6 10,7 9,1
Fosfomycin 33 100 2,4 3,7 6,9 4,8
Ciprofloxacin 86 70,93 29,07 25,6 35,1 42,9 42,1 46,6 34,6
Nitrofurantoin 35 100
Vancomycin 15 100
Tetracyclin 11 100 Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Ciprofloxacin wird zwar im Harn angereichert, doch Staphylokokken entwickeln während der
Therapie häufig eine Resistenz.
Interessant ist die ausgezeichnete Nitrofurantoin-Wirksamkeit
Staphylococcus saprophyticus
Tabelle 31: Staphylococcus saprophyticus 2011 Harn, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G --- 45,5 18,2 28,6 36,4 16,7
Aminopenicilline 12 33,33 66,67 45,5 18,2 33,3 25 14,3 21,4
Amoxicillin/Clavulansre 12 91,67 8,33
Piperacillin/Tazobactam 11 100
Isoxazolylpenicillin 12 91,67 8,33
Gentamicin 12 100 8,3
Trimethoprim 11 100 4,55 13,3 8,3 7,1 7,1
Ciprofloxacin 12 100
Nitrofurantoin ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Staphylococcus saprophyticus ist verantwortlich für das Dysurie-Syndrom bei jüngeren Frauen sowie
für einen Teil der unspezifischen Urethritis bei Männern. Staphylococcus saprophyticus ist generell
gut antibiotikaempfindlich. Fosfomycin gilt als unwirksam.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Harnwege Resistenzbericht 2011
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Enterokokken
Tabelle 32: Enterokokken 2011 Harn, Krankenhaus (stat. und amb.) Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009
%R
2007
%R
2005
%R
2004
%R
2003
%R
2002
Aminopenicilline 763 93,32 6,68 6,4 9,1 4,4 1,9 7 6,9
Amoxicillin/Clavulansre 764 93,32 6,68 6,4 8,9 4,4 1,9 6,7 6,9
Piperacillin/Tazobactam 757 94,19 5,81 6,4 8,9 4,3 1,9 6,6
Trimethoprim 150 4 96 100 100 --- --- --- ---
Nitrofurantoin 749 97,33 2,67 4,1 5,4 1,1 0,8 2,3
Linezolid 513 99,81 0,19 0,2
Vancomycin 760 99,87 0,13
Teicoplanin 760 100
Ciprofloxacin 218 52,29 47,71 36,9 --- --- --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
In dieser Tabelle sind neben Enterococcus faecalis und faecium auch Enterococcus casselliflavus und
gallinarum enthalten.
Tabelle 33: Enterokokken 2011 Harn, Niedergelassene
Antibiotika getestet %S %I %R %R 2009
%R 2007
%R 2005
%R 2004
%R 2003
%R 2002
Ampicillin 88 98,86 1,14 2,1 3,2 0,8 0,7 0,8
Amoxicillin/Clavulansre 88 98,86 1,14 2,1 3,2 0,8 0,7 0,8
Piperacillin/Tazobactam 88 98,86 1,14 2,1 3,2 0,8 0,7
Trimethoprim 12 8,33 91,67 100 --- --- --- ---
Nitrofurantoin 87 98,85 1,15 3,2 0,7 0,6 2 0
Linezolid 53 100
Vancomycin 88 100
Teicoplanin 88 100
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Auf Grund einer umfassenden natürlichen Antibiotika-Resistenz (Cephalosporine, Aminoglykoside in
Monotherapie, Chinolone, Trimethoprim [+Sulfamethoxazol ] und Lincosamide) stehen für die
Therapie von Enterokokkeninfektionen nur wenige Substanzen zur Verfügung.
Einschränkungen in der Resistenztestung nach EUCASTbei Bakterien aus dem Harntrakt:
Mecillinam:
Für Mecillinam gibt es nur für E. coli, Klebsiella spp. und Proteus mirabilis
Interpretationsrichtlinien.
Fosfomycin:
Für Fosfomycin-Trometamol gibt es keine Breakpoints für Agardiffusionstests.Es
ist somit eine MHK-Testung notwendig. Diese wird routinemäßig nicht
durchgeführt, sondern nur auf Anforderung bzw. wenn am Zuweisungsschein die
Gabe von Monuril angegeben ist.
Nitrofurantoin:
Für Nitrofurantoin gibt es nur für E. coli, Staphylokokken und Enterococcus
faecalis Interpretationsrichtlinien.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben weibliches Genitale Resistenzbericht 2011
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Keimnachweis aus Proben des weiblichen Genitaltrakts
Allgemeines
Im Jahr 2011 wurden von dieser Lokalisation 2804 Proben von 2572 Patientinnen untersucht.
Im Vordergrund stehen dabei 1926 Screening-Untersuchungen auf Streptokokken der Gr. B.
Dabei wird mit einfacher Methodik nur die Frage nach Vorhandensein oder Fehlen dieser Keime
beantwortet. Diese Untersuchungsart ist bei der folgenden Zusammenstellung der Häufigkeiten der
Erreger exkludiert.
Abbildung 15: Weiblicher Genitaltrakts 2011, Verteilung der häufigsten nachgewiesenen Keime
Die Vagina ist schon physiologisch ein Gebiet mit dichter Keimbesiedelung. Mitunter kann es
schwierig sein, zu verstehen, ob es sich bei den nachgewiesenen Keimen um Infektionserreger oder
um physiologische Flora handelt. Für die pathogene Relevanz und damit für eine Resistenztestung
sprechen hohe Keimzahlen möglicher Infektionserreger und ein stark entzündliches Zellbild in der
Gramfärbung.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben weibliches Genitale Resistenzbericht 2011
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Escherichia coli
Tabelle 34: Escherichia coli 2011, weibliches Genitale, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Aminopenicilline 84 69,05 30,95 27,9 32,1 30,2 20 21,8 31,3
Amoxicillin/Clavulansre 85 91,76 8,24 3 4,9 6 5,9 9 8,4
Piperacillin/Tazobactam 69 94,2 4,35 1,45 1,5 1,2 2,4
Cefuroxim 78 96,15 3,85 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 84 98,81 1,19 1,5 1,2
Imipenem 84 100
Meropenem 84 100 --- --- ---
Gentamicin 84 97,62 2,38 1,5 6,2 1,2 1,3 2,4
Amikacin
Ciprofloxacin 84 94,05 5,95 11,1 1,2 2,4 3,8 1,2
Trimethoprim --- --- --- --- --- --- 15,7 10,6 6,4 17,1
Trimethoprim/Sulfa. 71 78,87 21,13 16,4 21
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Staphylococcus aureus
Tabelle 35: Staphylococcus aureus 2011, weibliches Genitale, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 17 17,65 82,35 68 83,87 61,9 68,2 59,6 75,9
Isoxazolylpenicillin 17 100 2,4 2,1
Amoxicillin/Clavulansre 17 100 2,4 2,6
Gentamicin 17 88,24 11,76 8 4,8 6,7
Tetracyclin 4 9,1 5
Fosfomycin 2,4 4,9
Fusidinsäure 17 100 4,5 2,4 6,3
Ciprofloxacin 17 100 4 4,8 5,1
Erythromycin 17 88,24 11,76 24 19,35 9,5 18,2 23,8
Clindamycin 17 88,24 11,76 24 19,35 9,5 13,6 9,5
Rifampicin 17 100
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben weibliches Genitale Resistenzbericht 2011
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Streptococcus agalactiae (Streptokokken der Gruppe B)
Tabelle 36: Streptococcus agalactiae 2011, weibliches Genitale, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin 423 100
Ampicillin 423 100
Cefotaxim 423 100
Erythromycin 423 73,29 26,71 29,6 25,6 21,2 19,8 20,5 18
Clindamycin 423 71,87 28,13 27,5 25,3 21,5 19,4 14,9 17,7
Tetracyclin 256 23,44 76,56 77,5 79,4 73,7 78,1 78,9 72,2
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Auffällig ist auch die seit Jahren enorm hohe Resistenzrate gegen Tetracyclin im Vergleich zu anderen
Streptokokkenspezies.
Ciprofloxacin und Ofloxacin werden von EUCAST als nicht wirksam eingestuft.
Die hohe Zahl an Isolaten von Streptokokken der Gruppe B ist durch das umfangreiche Screening von
Schwangeren erklärbar. Ein positives Ergebnis wird sofort telefonisch an den Einsender
durchgegeben, wodurch eine gezielte Antibiotikaprophylaxe gegen Streptococcus agalactiae bei der
Geburt vorgenommen werden kann.
Dieses Screening-Programm ist ein effizienter und effektiver Weg, Neugeborenen-Erkrankungen und
Todesfälle zu verhindern, zumal die Untersuchung billig und einfach durchzuführen ist.
Die Positivrate der Screeninguntersuchungen auf Streptokokken der Gruppe B bei Schwangeren ist
ident mit dem Ergebnis aus dem Jahr 2007 und 2009 (Positivrate = 15%)
Abbildung 16: Strept B Screening
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Wunde – Drain - Abszess Resistenzbericht 2011
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Infektionserreger aus Wunden, Drains, Abszessen
Allgemeines
In die folgenden Auswertungen gehen 1715
Proben aus Wunden, Drains, Abszessen und
Entzündungsprozessen von insgesamt 1071
Patienten ein.
Durch ungenaue Angaben am Zuweisungsschein
(z.B.: Material „Unterschenkel“ anstatt „Abstrich
von einer Wunde am Unterschenkel“oder
„Abstrich von einem Abszess am Unterschenkel)
gehen leider sehr viele Proben für die
Auswertung verloren. Die folgende Tabelle bietet
somit nur orientierende Informationen über die
Häufigkeit der Erreger in diesen
Untersuchungsmaterialien
Abbildung 17:
Histologisches Präparat von einer vereiterten,
rupturierten epidermalen Einschlusszyste
Abbildung 18: Wunde_Drain_Abszess 2011, Verteilung der häufigsten nachgewiesenen aerob oder fakultativ aerob wachsenden Keime
Die Häufigkeit von anaerob wachsenden Keimen wird nicht in dieser Grafik dargestellt, diesbezüglich
siehe Kapitel „Anaerobier“.
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Staphylococcus aureus
Tabelle 37: Staphylococcus aureus 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 210 30 70 68,1 76 76,8 67,7 73,9 71,7
Isoxazolylpenicillin 209 92,82 7,18 0,4 2,4 6,9 5,8 4 4,6
Amoxicillin/Clavulansre 0,4 2,4 6,9 5,8 4,3 3,8
Gentamicin 209 94,26 5,74 6,5 11 13,2 13,9 12,3 10,1
Tobramycin 151 94,04 5,96 4,5 10 --- --- --- ---
Sulf/Trimethoprim 156 96,79 3,21 0,6 1,4 --- --- --- ---
Rifampicin 209 99,52 0,48 0,6 0,5 0,5 0
Erythromycin 209 86,12 0,48 13,4 13,3 12 14,4 15,8 17,3 15,3
Clindamycin 209 86,6 0,48 12,92 12,9 12 11,5 12,4 10,5 6,9
Tetracyclin 166 96,39 0,6 3,01 4,9 3,8 3,2 3,2 4,9 3,5
Tigecyclin 196 100 --- --- --- --- ---
Ciprofloxacin 208 87,98 0,48 11,54 6,1 12 13,5 10,5 14,2 15,2
Levofloxacin 152 87,5 0,66 11,84 2,8 9,5 --- --- --- ---
Moxifloxacin 154 88,31 1,3 10,39 2,2 6,6 --- --- --- ---
Fosfomycin 165 100 0,4 1,4 1,9 2,8 4,3
Fusidinsäure 209 99,04 0,96 0,4 0,3 1,2 0,8 1,4
Vancomycin 153 100
Teicoplanin 151 100 --- --- --- ---
Linezolid 196 100 --- --- --- ---
Mupirocin 153 100 0,5
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Auffällig ist ein Wiederanstieg der Chinolonresistenz und somit ein Ende des erfreulichen
Trends der letzten Jahre.
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Koagulase negative Staphylokokken
Als Hauptbestandteil der physiologischen Haut- und Schleimhautflora treten koagulasenegative
Staphylokokken häufig als Kontaminanten im Untersuchungsmaterial auf. Eine Resistenztestung wird
deshalb nur bei Isolaten durchgeführt, denen möglicherweise eine pathogene Bedeutung zukommt.
Die Anzahl der Primärisolate von koagulase-negativen Staphylokokken mit Antibiogramm ist daher
gering. Siehe diesbezüglich auch das Kapitel „Gefäßkatheter“ und „Gelenkspunktate“.
Tabelle 38: koag. neg. Staphylokokken 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 19 5,26 94,74 80,4 79,6 80,2 73,3 79,3 76,2
Isoxazolylpenicillin 19 31,58 68,42 62,5 51,4 54,8 47,4 50 52,6
Amoxicillin/Clavulansre 19 31,58 68,42 61,7 51,1 54,4 47,4 51,5 48
Gentamicin 19 47,37 52,63 28,9 30,3 34,7 27,6 31,8 28,4
Rifampicin 19 100 2,2 5,1 4 2,2 3,3 2,9
Erythromycin 19 15,79 84,21 56,3 50,7 61,6 54 58,5 54,7
Clindamycin 19 31,58 68,42 53,3 48,2 52 46 44,6 38,9
Tetracyclin 11,1 12,9 8,8 6,7 12,9 12,2
Ciprofloxacin 19 36,84 63,16 33,3 32,9 42,7 35,8 40,9 48
Fosfomycin 47,8 40,1 30,6 44,5 37,7 36,8
Fusidinsäure 19 68,42 31,58 27,1 15,7 21,8 16,9 17,1 16,9
Vancomycin 0,7
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Der massive Anstieg der Resistenz gegenüber Gentamicin und Erythromycin bzw. Clindamycin ist
mit hoher Wahrscheinlichkeit auf die veränderte MHK-Interpretation gemäß EUCAST
zurückzuführen.
Enterokokken
Tabelle 39: Enterokokken 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Aminopenicilline 144 81,94 18,06 15,9 13,5 10,6 9,6 6,7 9,1
Amoxicillin/Clavulansre 144 81,94 18,06 15,9 13,7 10 9,6 6,7 9,2
Linezolid 143 100 0,6
Vancomycin 146 97,95 2,05 2,4 0,5
Teicoplanin 144 100 0,6 --- ---- ----
Tigecyclin 127 100
Piperacillin/Tazobactam 142 83,1 16,9
Ampicillin/Sulbactam 33 84,85 15,15 Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Bei der Auswertung in obiger Tabelle wurde keine Unterscheidung zwischen Enterococcus sp.,
Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium und anderen gemacht.
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In Übereinstimmung mit EUCAST
werden Enterokokken als natürlich
resistent betrachtet gegen:
Cephalosporine
Aminoglykoside in
Monotherapie
Trimethoprim
(und Trim./Sulf. )
Clindamycin
Chinolone
Abbildung 19: Infizierte Bauchwunde
Escherichia coli
Tabelle 40: Escherichia coli 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Aminopenicilline 162 60,49 39,51 43 34,4 29,5 25,8 22,6 29,2
Amoxicillin/Clavulansre 160 76,88 1,88 21,25 14 8,1 10,1 7,5 6,9 6,3
Piperacillin/Tazobactam 147 85,71 1,36 12,93 12 6,2 2,6 1,4 1 1
Cefuroxim 131 87,02 0,76 12,21
Cefotaxim 160 93,13 6,88 9,7 5,2 2,6 0,5 0,5 0,6
Imipenem 160 100 0
Meropenem 160 100 --- --- --- ---
Gentamicin 160 97,5 2,5 4,8 6,7 4,8 3,8 0,5 1,1
Amikacin 0,5 0,6
Tigecyclin 137 99,27 0,73 2,9
Sulf/Trimethoprim 138 81,16 18,84 21 22,1 TMP 16,7
TMP 17,1
TMP 9,8
TMP 14,7
Ciprofloxacin 161 78,26 2,48 19,25 17 17,5 9 3,4 3 1,7
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Pseudomonas aeruginosa
Tabelle 41: Pseudomonas aeruginosa 2011, Wunde_Drain_Abszess, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Piperacillin/Tazobactam 59 88,14 11,86 6,7 4,1 6,5 2,9 4,3 7,1
Ceftazidim 60 90 10 4,4 4,1 4,3 1,5 5,5
Cefepime 61 88,52 11,48 4,6 2,3 2
Imipenem 61 83,61 3,28 13,11 12 15,3 12 12,4 14,5 8,6
Meropenem 61 85,25 1,64 13,11 9,9 5,1 9,9
Gentamicin 60 91,67 8,33 5,6 4,1 6,5 9,5 9,4 10,3
Amikacin 59 91,53 3,39 5,08 3,3 5,1 3,3 1,5 4,3 5,2
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Der Anteil an Carbapenem-resistenten Isolaten ist ansteigend. Ursache für eine Unempfindlichkeit
können Veränderungen der Permeabilität, Effluxmechanismen oder Bildung von Enzymen, wie einer
Metallo-ß-Lactamase, sein.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Wunde – Drain - Abszess Resistenzbericht 2011
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Proteus-Morganella Gruppe
Tabelle 42: Proteus-Morganella-Gruppe 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R 2009
%R 2007
%R 2005
%R 2004
%R 2003
%R 2002
Aminopenicilline 77 46,75 53,25 57,1 56,7 59 57,5 61,8 51,1
Amoxicillin/Clavulansre 78 65,38 34,62 23,8 22 23,8 21,1 24,3 19,8
Piperacillin/Tazobactam 72 100 2,4 1 0
Cefuroxim 62 87,1 12,9 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 76 93,42 5,26 1,32 3,6 1,3 1,2
Ceftazidim 64 95,31 3,13 1,56 3,6 1,3 --- ----
Meropenem 75 100 --- --- --- ---
Gentamicin 75 82,67 17,33 4,9 3,4 10,3 7,5 9,9 5,6
Amikacin 1,1
Sulf/Trimethoprim 64 76,56 23,44 25,6 22 TMP 37,7
TMP 27,4
TMP 30,4
TMP 29,1
Ciprofloxacin 76 80,26 6,58 13,16 6,1 9,8 12,8 12,3 4 4,4
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Detailergebnisse
für Proteus
mirabilis
Tabelle 43: Proteus mirabilis 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009
Aminopenicilline 55 63,64 36,36 31,5
Amoxicillin/Clavulansre 55 80 20 5,6
Piperacillin/Tazobactam 53 100
Cefuroxim 52 100 -
Cefotaxim 55 100
Ceftazidim 50 100
Meropenem 55 100
Gentamicin 55 83,64 16,36 5,6
Amikacin
Sulf/Trimethoprim 50 78 22 29,6
Ciprofloxacin 55 81,82 7,27 10,91 7,4
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Klebsiella sp.
Tabelle 44: Klebsiella sp. 2011, Wunde, Drain, Abszess, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Amoxicillin/Clavulansre 38 81,58 18,42 10,7 7,7 12 14,1 4,8 9,5
Piperacillin/Tazobactam 8 7,7 10,8 9,9 3,2 4,2
Cefuroxim 33 78,79 3,03 18,18 - - - - - -
Cefotaxim 38 92,11 7,89 1,5 4,9 5,6 2,7
Ceftazidim 26 92,31 3,85 3,85 4,9 6,2 --- ---
Imipenem 38 100
Meropenem 38 100
Gentamicin 38 97,37 2,63 1,3 1,2
Amikacin 1,2
Trimethoprim --- 12,2 11,3 4,8 9,5
Sulf/Trimethoprim 26 88,46 11,54 6,8 7,6
Ciprofloxacin 38 89,47 10,53 5,3 4,6 3,7 1,4
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Blut Resistenzbericht 2011
Seite 41 von 64
Infektionserreger aus Blutkulturen
Allgemeines
Im Jahr 2011 wurden 4657 Blutkulturen von 1761 Patienten untersucht. Das Material langt als
beimpfte Bactec-Kulturflasche ein, die in einem Automaten bebrütet und hinsichtlich Wachstum von
Mikroorganismen detektiert wird. Die überwiegende Zahl der Proben zeigt kein Keimwachstum.
Abbildung 20: Blutkulturen 2011, Verteilung der am häufigsten nachgewiesenen Keime (Darstellung aller Keime mit mehr als 6 Isolaten)
Auch unter den seltener nachgewiesenen Keimen finden sich interessante Ergebnisse:
1 Patient mit Brucella melitensis
1 Patient mit Neisseria meningitidis
3 Patienten mit Listeria monozytogenes
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Blut Resistenzbericht 2011
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Koagulase negative Staphylokokken
Koagulase negative Staphylokokken können auch als Kontaminationen von der Haut oder von
Gefäßkathetern in Blutkulturen vorkommen. Eine kritische Wertung des Blutkulturergebnisses ist
notwendig. Der mehrfache Nachweis des selben Keimes ist ein wichtiger Hinweis auf eine Infektion.
Tabelle 45: koag. neg. Staphylokokken 2011, Blutkulturen, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 118 7,63 92,37 90,5 91 89,7 88,1 86 91
Isoxazolylpenicillin 120 29,17 70,83 76,1 72 72,5 72,7 71 78,2
Amoxicillin/Clavulansre 120 29,17 70,83 76,6 72 72,5 72,7 68,5
Gentamicin 119 59,66 40,34 30,3 42 38,2 43,1 37,3 48,7
Tetracyclin 60 61,67 15 23,33 19,4 12 19,1 15,5 19,2
Fosfomycin 59 42,37 57,63 58 53 56,1 61,1 54,5 62,8
Fusidinsäure 121 78,51 21,49 33,3 26 30,9 33,6 24 29,1
Ciprofloxacin 120 39,17 1,67 59,17 60,7 60 55,5 54,5 44 68,4
Erythromycin 121 32,23 67,77 76,8 70 75,7 84,5 66 78,2
Clindamycin 121 38,02 0,83 61,16 70 62 65,7 76,6 53,5 66,7
Rifampicin 118 96,61 3,39 5,8 4,9 4,6 4,5 6 5,2
Vancomycin 71 100
Moxifloxacin 60 35 31,67 33,33 35,1 --- --- --- --- ---
Tigecyclin 109 99,08 0,92 --- --- --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Staphylococcus aureus
Tabelle 46: Staphylococcus aureus 2011, Blutkulturen, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 58 41,38 58,62 65,1 78 79,1 77,3 76,2 85,7
Isoxazolylpenicillin 59 98,31 1,69 9,3 11,4 4,8 14,3
Amoxicillin/Clavulansre 59 98,31 1,69 9,3 11,4 3,6 ---
Gentamicin 59 91,53 8,47 4,7 3,4 9,3 15,9 9,5 26,2
Tetrazyklin 26 88,46 11,54 5,1 7 7 7,1 ---
Fosfomycin 26 100 4,7 7 2,4
Fusidinsäure 59 100 1,7
Ciprofloxacin 59 93,22 6,78 7 5,1 11,6 23,3 11,1 54,5
Erythromycin 59 84,75 15,25 4,7 10 18,6 11,4 19 28,6
Clindamycin 59 88,14 11,86 4,7 10 16,3 11,4 4,8 19
Rifampicin 59 100 4,7 2,3
Vancomycin 35 100
Teicoplanin --- --- --- ---
Linezolid 54 100 --- --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Der massive Anstieg der Resistenz gegenüber Gentamicin und Erythromycin bzw. Clindamycin ist mit
hoher Wahrscheinlichkeit auf die veränderte MHK-Interpretation gemäß EUCAST zurückzuführen.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Blut Resistenzbericht 2011
Seite 43 von 64
Escherichia coli
Tabelle 47: Escherichia coli 2011, Blutkulturen, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Aminopenicilline 93 46,24 53,76 40,8 42 35,3 34,4 34,4 19,1
Amoxicillin/Clavulansre 94 69,15 2,13 28,72 10 17 5,9 15,6 12,9
Piperacillin/Tazobactam 88 86,36 4,55 9,09 5,7 13 6,3 3,2
Cefuroxim 79 83,54 16,46 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 93 86,02 13,98 5,7 11
Ceftazidim 47 87,23 8,51 4,26 5,7 11 --- ---
Imipenem 93 100
Meropenem 93 100 --- --- --- ---
Gentamicin 93 94,62 5,38 2,9 5,6 3,2
Ciprofloxacin 93 63,44 1,08 35,48 20 24 8,8 15,6 12,9 0
Sulf/Trimethoprim 43 62,79 37,21 27,5 29 TMP 20,6
TMP 12,5
TMP 16,1
TMP 4,8
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Bemerkenswert ist die Resistenzzunahme insbesondere bei Aminopenicillin, Amoxicillin/Clavulansre,
Ciprofloxacin und Trimethoprim/Sulf..
.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Liquor Resistenzbericht 2011
Seite 44 von 64
Keime aus Liquorkulturen
Allgemeines
Im Jahr 2011 wurden 133 Liquorkulturen von 116 Patienten untersucht.
Abbildung 21: Liquorkulturen 2011, Verteilung aller positiven Keimnachweise.
Erreger einer Meningitis (Meningokokken, Pneumokokken, Enterobakterien) sind gut empfindlich
gegen die übliche ungezielte Therapie, ein Resistenzproblem ist nicht auszumachen.
Bei den gezüchteten koag.neg. Staphylokokken ist kritisch zu hinterfragen, ob es sich dabei nicht um
eine Kontamination durch Hautkeime bei der Punktion handelt. Der mehrmalige Nachweis des selben
Keimes spricht jedoch für eine Infektion.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Gefäßkatheter Resistenzbericht 2011
Seite 45 von 64
Keime von Gefäßkatheterspitzen
Allgemeines
Im Jahr 2011 wurden 654 Gefäßkatheterspitzen von 452 Patienten untersucht.
Abbildung 22: Gefäßkatheterspitzen 2011, Verteilung der am häufigsten nachgewiesenen Keime (Darstellung aller Keime mit mehr als 10 positiven Isolaten)
Von besonderer Bedeutung bei der Besiedelung von
Kathetern ist die Fähigkeit vieler Keime, einen
Biofilm zu entwickeln.
Grundsätzlich ist eine Untersuchung von
Gefäßkatheterspitzen sinnvoll, wenn Verdacht auf
eine mögliche Katheterinfektion besteht. Zur
Klärung dieser Frage ist auch die Abnahme einer
peripheren Blutkultur, eventuell auch einer
Blutkultur durch den noch liegenden Katheter
notwendig.
Für die Operative Intensivstation des LKH Leoben
erfolgt die Keimzahlbestimmung semiquantitativ
nach Maki. Alle anderen Einsender schicken die
Spitzen in einer Nährlösung bzw. in einem
Abstrichröhrchen mit Transportmedium. Eine
Keimzahlbestimmung ist hier nicht möglich.
Abbildung 23:
Katheter-Biofilm Quelle:http://people.ku.edu/~gijis/portfolio/cou
rses/course_1/assign_3/index.html
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Gefäßkatheter Resistenzbericht 2011
Seite 46 von 64
Koagulase negative Staphylokokken
Tabelle 48: koag. neg. Staphylokokken 2011, Gefäßkatheter, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 159 2,52 97,48 96,6 96 96,2 92,2 92 91,2
Isoxazolylpenicillin 160 18,75 81,25 82,9 81 81,1 79,9 74,4 77,7
Amoxicillin/Clavulansre 160 18,75 81,25 83,3 81 81,1 79,9 72
Gentamicin 159 49,06 50,94 55,9 56 54,9 50,3 43,5 52,7
Tetracyclin 133 51,13 27,82 21,05 15,6 21 15 10,2 17,5 18,2
Fosfomycin 131 45,04 54,96 61,7 58 55,7 54,2 48,1 55,2
Fusidinsäure 159 66,67 1,89 31,45 23,8 32 40 35,2 35,7 30,7
Ciprofloxacin 161 24,22 0,62 75,16 74,4 71 68,8 64,8 69,7 77,6
Erythromycin 160 31,25 68,75 76,3 81 82,6 76,5 79,3 77,9
Clindamycin 160 33,13 66,88 70,4 78 77,5 72,6 65,4 57,8
Rifampicin 159 91,19 8,81 4,4 3,6 10,5 9 10 5,7
Vancomycin 124 98,39 1,61
Linezolid 148 99,32 0,68 --- --- --- --- ---
Moxifloxacin 120 20,83 45 34,17 47,7 --- --- --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Gelenkspunktate Resistenzbericht 2011
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Keime aus Gelenkspunktaten 553 Gelenkspunktate und –abstriche von 297 Patienten wurden untersucht.
Eine bakterielle Infektion eines Gelenks ist immer ein dramatisches Ereignis. Eitrige Entzündungen
(z.B. mit Staphylococcus aureus) zerstören die Gelenksstruktur und erfordern chirurgisches Handeln
und antibiotische Therapie.
Chronische Infekte mit koag.neg. Staphylokokken (und anderen Hautkeimen) sind wesentlich an der
Problematik der Prothesenlockerung beteiligt.
Abbildung 24: Gelenke 2011, Verteilung der am häufigsten nachgewiesenen Keime
(Darstellung aller Keime mit zumindest 2 positiven Isolaten)
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Staphylokokken
Tabelle 49: Staphylococcus aureus 2011, Gelenke, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009 %R2007
Penicillin G 26 50 50 58,8 61,1
Isoxazolylpenicillin 26 96,15 3,85
Amoxicillin/Clavulansre 26 96,15 3,85
Gentamicin 26 96,15 3,85 11,8 5,6
Fosfomycin 23 100
Fusidinsäure 26 96,15 3,85
Ciprofloxacin 26 96,15 3,85 17,7
Erythromycin 26 92,31 7,69 17,7 11,1
Clindamycin 26 92,31 7,69 17,7 11,1
Rifampicin 26 96,15 3,85
Vancomycin 23 100
Linezolid 26 100 ---
Moxifloxacin 23 95,65 4,35 20 ---
Mupirocin 23 100 ---
Teicoplanin 23 100 ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Tabelle 50: koag. neg. Staphylokokken 2011, Gelenke, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009 %R2007
Penicillin G 30 23,33 76,67 71,4 75
Isoxazolylpenicillin 27 62,96 37,04 50 63,6
Amoxicillin/Clavulansre 27 62,96 37,04 50 63,6
Gentamicin 27 74,07 25,93 30 45,5
Fosfomycin 26 57,69 42,31 47,6 27,3
Fusidinsäure 27 74,07 25,93 20 36,4
Ciprofloxacin 27 70,37 29,63 30 36,4
Erythromycin 28 46,43 53,57 61,9 81,8
Clindamycin 28 60,71 39,29 57,1 81,8
Rifampicin 27 85,19 14,81 20 9,1
Vancomycin 24 100
Linezolid 26 100 ---
Moxifloxacin 21 71,43 4,76 23,81 12,5 ---
Teicoplanin 21 95,24 4,76 ---
Tigecyclin 26 100 ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
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Seite 49 von 64
Keime von Intensivstationen
Pseudomonas aeruginosa
Pseudomonas aeruginosa kann unter laufender
Antibiotikatherapie gegen jedes Antibiotikum
resistent werden.
Abbildung 25:
Pseudomonas aeruginosa
Tabelle 51: Pseudomonas aeruginosa 2011, Primärisolate, alle Materialien, Intensiv
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Piperacillin/Tazobactam 70 81,43 18,57 9,1 12 12,1 13,9 5,6 11,9
Ceftazidim 75 85,33 1,33 13,33 11,8 8,6 7,7 2,6 5,6 12,8
Cefepime 75 92 8 1,3 3,4 8,6 10,5
Imipenem 75 78,67 1,33 20 13 24 21,1 16,5 20,9 13,2
Meropenem 76 81,58 3,95 14,47 11,7 5,4 14,6
Gentamicin 75 94,67 5,33 2,6 3,2 17,6 19,8 10,9 13
Amikacin 1,3 2,2 4,5 6,3 7,3 6,6
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
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Staphylococcus aureus
Tabelle 52: Staphylococcus aureus 2011, Primärisolate, alle Materialien, Intensiv
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 86 25,58 74,42 68 77 83,5 80,3 81,7 76,7
Isoxazolylpenicillin 87 96,55 3,45 1,5 1,6 25,3 18,7 14,6 23,3
Amoxicillin/Clavulansre 86 96,51 3,49 1,5 1,6 25,3 18,7 13,3
Gentamicin 87 94,25 5,75 5,9 16 26,6 29,3 28,9 31
Tetrazyklin 51 96,08 3,92 1,5 3,2 1,3 5,4 3,4 4
Fosfomycin 51 100 1,3 8,1 2,7 1,6
Fusidinsäure 86 98,84 1,16 1,6 1,3 1,4
Ciprofloxacin 87 89,66 10,34 16 16 32,9 30,7 31,7 50
Erythromycin 86 84,88 15,12 13 13 28,2 34,7 24,7 36,7
Clindamycin 86 83,72 1,16 15,12 13 15 25,6 30,7 21,9 28,3
Rifampicin 86 98,84 1,16 2,6
Vancomycin 46 100
Levofloxacin 45 88,89 11,11 12 --- --- --- --- ---
Linezolid 81 100 --- --- --- --- ---
Moxifloxacin 48 87,5 2,08 10,42 11 --- --- --- --- ---
Mupirocin 46 100 --- --- --- --- ---
Teicoplanin 45 97,78 2,22 --- --- --- --- ---
Tigecyclin 80 100 --- --- --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Intensivstation Resistenzbericht 2011
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Escherichia coli
Tabelle 53: Escherichia coli 2011, alle Materialien, Intensiv
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Aminopenicilline 160 40,63 59,38 47,2 39,5 41,7 42,4 29 43,9
Amoxicillin/Clavulansre 159 61,01 1,89 37,11 12,1 16,4 19,8 15,2 10,9 18,3
Piperacillin/Tazobactam 145 75,86 3,45 20,69 7,9 8,5 1,9 3 3,3 11,1
Cefuroxim 125 77,6 22,4 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 158 86,71 0,63 12,66 4,3 7 3,7 1 1,2
Ceftazidim 109 82,57 9,17 8,26 4,3 7 3,7 1,1 --- ---
Imipenem 114 100
Meropenem 130 100
Gentamicin 158 93,67 6,33 2,9 7 4,7 3,1 1,2
Amikacin
Sulf/Trimethoprim 100 67 33 18,75 20,4 23,6 TMP
13,1 TMP
18,3 TMP
9,8 TMP
Ciprofloxacin 159 67,92 1,26 30,82 18,4 23,6 11,3 8,2 3,3 7,2
Nitrofurantoin 50 92 4 4
Cefoxitin 151 90,07 3,97 5,96 6,1 10,3
Ertapenem 99 100 --- --- --- --- ---
Tigecyclin 81 100 --- --- --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Klebsiella sp.
Tabelle 54: Klebsiella sp. 2011, alle Materialien, Intensiv
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Amoxicillin/Clavulansre 57 85,96 14,04 14,8 13,5 19,4 12 12,3 19,4
Piperacillin/Tazobactam 56 85,71 5,36 8,93 12,3 12,3 12,9 10,7 7,6 17,7
Cefuroxim 52 78,85 21,15 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 57 96,49 3,51 6,8 6,5 5,3 6,1
Ceftazidim 44 95,45 2,27 2,27 6,8 6,5 5,6 --- ---
Imipenem 43 100
Meropenem 53 100 --- --- --- ---
Gentamicin 57 98,25 1,75 1,2 1,4 3,2
Amikacin
Sulf/Trimethoprim 44 88,64 11,36 7,4 8,7 14,5 10,8 9,2 18,2
Ciprofloxacin 57 82,46 1,75 15,79 2,5 6,8 3,2 2,7 4,6
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
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Enterobacter Gruppe
Tabelle 55: Enterobacter-Gruppe 2011, alle Materialien, Intensiv
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Amoxicillin/Clavulansre 52 100 100 100 100 98,4 97,6 98,2
Piperacillin/Tazobactam 52 76,92 23,08 27,5 29,2 12,2 7,8 7,1 18,4
Cefotaxim 55 61,82 7,27 30,91 32,5 39,1 32,7 20,3 33,3
Ceftazidim 45 57,78 11,11 31,11 35 38,5 30,6 19,4 --- ---
Imipenem 44 100 2,2 1,7
Meropenem 51 100 --- --- --- ---
Gentamicin 52 98,08 1,92 1,6
Amikacin 1,8
Sulf/Trimethoprim 42 97,62 2,38 2,7 4,9 8,2 9,4 2,4 10,9
Ciprofloxacin 52 96,15 3,85 4,7 4,1 7,8 5
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Bei Enterobacter, Serratia, Citrobacter, Providentia und Morganella morganii ist eine Therapie
mit Cephalosporinen 2 und 3 auch bei vorhandener in vitro-Empfindlichkeit nicht indiziert, weil es
durch die Induktion von Betalaktamasen zur Selektion von resistenten Mutanten kommen
kann.
Das in vitro Ergebnis „empfindlich“ bei Piperacillin/Tazobactam lässt nicht sicher auf eine
Wirksamkeit in vivo schliessen.
Siehe Kapitel Multiresistente Erreger > Enterobakterien und Breitspektrumbetalaktmasen > AmpC
Stenotrophomonas maltophilia
Stenotrophomonas maltophilia ist ein Keim, der in erster Linie auf Intensivstationen in
Atemwegssekreten gefunden wird. Seine Selektion ist häufig die Folge einer Therapie mit
Carbapenemen (natürliche Resistenz auf Carbapeneme!).
Tabelle 56: Stenotrophomonas maltophilia 2011, alle Materialien, Intensiv
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009 %R2007 %R2005 %R2004 %R2003
Sulf/Trimethoprim 16 93,75 6,25 4,8
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Für die Resistenztestung von Stenotrophomonas maltophilia gibt es 2011 von CLSI nur
Interpretationsrichtlinien für Ticarcillin/Clavulansäure, Ceftazidim, Minocylin, Levofloxacin und
Trimethoprim/Sulfa. EUCAST gibt überhaupt nur für Trimethoprim/Sulfa Richtlinien an. Für weitere
Therapieoptionen gibt es Informationen unter www.eucast.org
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Multiresistente Erreger Resistenzbericht 2011
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Multiresistente Erreger
Staphylococcus aureus
Staphylococcus aureus wurde im Jahr 2011 aus
1936 Proben von 1214 Patienten isoliert.
Grundsätzlich unterscheidet man zwischen dem
1. „methicillin-sensiblen“ Staphylococcus
aureus (= MSSA nachgewiesen bei
1162 PatientInnen) und dem
2. „methicillin-resistenten (oder auch
multiresistenten) Staphylococcus aureus
(= MRSA nachgewiesen bei 60
PatientInnen)
4,9% aller Primärisolate von Staph. aureus
waren im Jahr 2011 MRSA.
Abbildung 26:
Staphylococcus aureus in einer Blutkultur
Tabelle 57: Staphylococcus aureus (MSSA) 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 1169 30,71 69,29 67,24 71,4 74,3 68,5 71 71,6
Isoxazolylpenicillin 1169 100
Amoxicillin/Clavulansre 1169 100
Gentamicin 1169 93,93 6,07 6,35 7,1 7,7 7,9 9,8 6,7
Tetrazyklin 736 96,74 0,14 3,13 3,71 2,2 2,4 3,9 4,7 4,8
Fosfomycin 757 99,34 0,66 0,09 0,2 0,5 1,1 2,7 1,8
Fusidinsäure 1099 98,91 0,09 1 0,45 0,2 0,7 0,6 0,6 0,7
Ciprofloxacin 1168 94,43 0,09 5,48 4,47 6 8 6,2 10 13,7
Erythromycin 1099 86,99 0,09 12,92 10,7 11,9 11,5 13,5 14,3 13,2
Clindamycin 1099 87,9 0,18 11,92 10,16 11,6 8,5 10,5 5,1 2,6
Rifampicin 1099 99,91 0,09 0,2 0,3 0,1
Vancomycin 663 100
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Rund 70% der Stämme sind „Penicillinasebildner“, zeigen daher keine Empfindlichkeit auf nicht-
penicillinasefeste Penicilline (Penicillin, Ampicillin)
Ausgezeichnete Wirkung besteht bei Zugabe eines Betalaktamase-Hemmers (z.B. Clavulansäure
bei Augmentin)
Ausgezeichnete Wirkung ist schon bei Erstgenerations-Cephalosporinen zu erwarten (z.B.
Cefazolin) >> Beachte die Bedeutung in der perioperativen Antibiotikaprophylaxe.
Ausgezeichnete Wirkung ist auch bei anderen Antibiotika, wie Fosfomycin, Fusidinsäure und
Rifampicin, anzunehmen.
Auf Vancomycin sind MSSA zu 100% sensibel. Vancomycin bringt gegenüber anderen
wirksamen Antibiotika aber keinen Vorteil, es soll bei MSSA daher nicht verwendet werden.
Ciprofloxacin wird nur zur Überwachung der Resistenzsituation getestet und nicht routinemäßig
am Befund angegeben.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Multiresistente Erreger Resistenzbericht 2011
Seite 54 von 64
Tabelle 58: MRSA 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Penicillin G 61 100 100 100 100 100 100 100
Isoxazolylpenicillin 61 100 100 100 100 100 100
Amoxicillin/Clavulansre 62 100 100 100 100 100 100
Gentamicin 62 95,16 1,61 3,23 10,8 59,4 88,3 86,9 93,6 96,1
Tetrazyklin 40 92,5 2,5 5 5,6 13,3 2,3 6,1 2,4
Fosfomycin 44 100 10,8 18,8 9,9 16,7 15,4 14,6
Fusidinsäure 50 98 2 3,3 5,7 1,2 1,3 2
Ciprofloxacin 62 14,52 85,48 75,7 68,8 95,7 95,2 96 91,1
Levofloxacin 36 22,22 77,78 77,4 60 --- --- --- ---
Moxifloxacin 36 22,22 77,78 69 55 --- --- --- ---
Erythromycin 50 36 64 75 71 86,2 89,3 93,3 87,8
Clindamycin 51 35,29 64,71 72,2 74,2 86,2 88,1 86,7 85,7
Rifampicin 50 100 2,3 2,6
Vancomycin 44 100
Teicoplanin 37 100 --- --- --- ---
Quinupristin/Dalfopristin 19 100 1,6
Linezolid 55 98,18 1,82
Mupirocin 50 100 23,3 7,5 12,3 11,6 6,5
Sulf/Trimethoprim 49 93,88 6,12 3,4 2,6 7,4 4,9
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate
Abbildung 27: MRSA-Raten 1996 bis 2011
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Laut EUCAST sind alle MRSA klinisch resistent auf alle Betalaktam-Antibiotika (Penicilline,
Cephalosporine, Carbapeneme, alle Kombinationen mit Betalaktamasehemmern)
Beim hospital associated MRSA (ha-MRSA, überwiegend bei Patienten mit verschiedenen
Risikofaktoren im Krankenhaus und in Pflegeeinrichtungen nachgewiesen) sind häufig
Resistenzen gegen Aminoglykoside, Chinolone, Makrolide und Lincosamide zu verzeichnen.
Sichere Wirksamkeit in unserem Einsendebereich ist bis jetzt bei Vancomycin und Linezolid zu
erwarten.
Hohe Wahrscheinlichkeit der Wirksamkeit ist bei Fusidinsäure, Rifampicin, Folsäurehemmern
und Tetrazyklinen zu erwarten.
Für die Lokaltherapie steht Mupirocin zur Verfügung, ggf. Schleimhaut-desinfektionsmittel.
Wegen der bereits nachgewiesenen Resistenzen ist jedoch eine Resistenztestung vor der
Verabreichung angezeigt.
Eine zunehmende Bedeutung gewinnen die community acquired methicillinresistenten
Staphylococcus aureus-Stämme (cMRSA). Die klinische Besonderheit dieser Stämme liegt in
ihrer Fähigkeit, multiple, rezidivierende, meist tiefe Abszesse zu verursachen. Beschrieben sind
auch schwer bis letal verlaufende nekrotisierende Pneumonien. Betroffen sind meist Patienten
jüngeren Alters, oft mit einer positiven Reiseanamnese , z. B. Aufenthalt in Südostasien oder den
USA. Erfahrungsgemäß finden sich im engen Umfeld der Patienten asymptomatische Träger, die
saniert werden sollten. Im Gegensatz zu ha MRSA fehlen bei cMRSA meist zusätzliche
Mehrfachresistenzen, jedoch tritt häufig eine Resistenz gegen Fusidinsäure auf.
Molekularbiologisch gelingt meist der Nachweis des sogenannten PVL-Gens.
In den letzten Jahren konnten bei landwirtschaftlich tätigen Personen la-MRSA (lifestock
associated-MRSA) nachgewiesen werden, die erstmals in Holland bei Schweinen endeckt wurden.
Neben der Methicillinresistenz weisen diese Stämme meist nur eine Tetracyclinresistenz auf,
selten eine Resistenz gegen Makrolide und Lincosamide.
Das Patientenmanagement bei MRSA sollte sich an Leitlinien orientieren, die von namhaften
Organisationen erstellt wurden. Für den Bereich der Steiermärkischen Krankenanstalten
Ges.m.b.H. gelten die Fachrichtlinien 11 mit dem Titel „Patienten mit MRSA-was tun?“ und 12
„Erläuterungen zum MRSA-Merkblatt 1994 des BM für Gesundheit und Konsumentenschutz“.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Multiresistente Erreger Resistenzbericht 2011
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Multiresistente Enterobakterien und Breitspektrumbetalaktamasen
Ein sehr wichtiger Resistenzmechanismus ist die Bildung von Betalaktamasen, im Jahr 2001 waren
bereits 340 verschiedene bekannt.
Es gibt solche mit engem Spektrum (z.B. TEM bei Ampicillinresistenz bei E.coli) und solche mit
breitem Spektrum (Resistenz auch bei Cephalosporinen der 3.Generation > ESBL und AmpC).
ESBL (extended spectrum Betalaktamase)
Kommt vorwiegend bei E.coli und Klebsiella vor, ist aber auch möglich bei Proteus mirabilis,
Salmonella, Shigella, anderen Enterobacteriaceae und Pseudomonas aeruginosa.
ESBL können alleCephalosporine (auch 3b.Gen.) hydrolysieren, alle Penicilline und
Monobaktame. Die therapeutischen Optionen sind stark eingeschränkt, meist sind nur mehr
Carbapeneme wirksam.
Der Resistenzmechanimus ist in der Regel auf Plasmiden lokalisiert und kann auf andere
Bakterienspecies übertragen werden (sog. infektiöse Resistenz).
Häufig enthalten diese
Resistenzplasmide zusätzliche
Resistenzgene, die den Keim
unempfindlich gegen andere
Substanzgruppen (Aminoglykoside,
Trimethoprim/Sulfamethoxazol,
Chinolone) machen.
Als multiresistente Erreger machen
die ESBL-bildenden Bakterien
strenge Hygienemaßnahmen
erforderlich. Insbesonders ist auf die
Stuhlhygiene zu achten, da der Darm
das natürliche Habitat der
Enterobakterien darstellt. Für den
Bereich der Steiermärkischen
Krankenanstalten Ges.m.b.H. gilt die
Fachrichtlinie 27 mit dem Titel
„Hygienemaßnahmen bei
PatientInnen mit ESBL-bildenden
Bakterien“
Abbildung 28:
ESBL-bildender Escherichia coli
AmpC
Dieser Resistenzmechanismus ist viel häufiger und entwicklungsgeschichtlich älter als die
ESBL-Bildung. Er kommt konstitutiv in Enterobacter, Serratia, Citrobacter freundii und
Morganella morganii vor und ist vorwiegend chromosomal codiert.
Das Gen ist normalerweise durch einen Repressor unterdrückt, kann bei Anwesenheit von
Antibiotika (z.B.: Cephalosporine der 2. oder 3. Generation) aber induziert werden. Durch die
Hyperproduktion des Enzyms und vor allem durch Selektion bereits vorhandener stabiler
Mutanten kann sich ein ursprünglich noch empfindlich erscheinender Stamm innerhalb
weniger Tage als hoch resistenter Erreger entpuppen.
Bei Enterobacter, Serratia, Citrobacter freundii und Morganella morganii ist eine
Therapie mit Cephalosporinen 2 und 3a auch bei vorhandener in vitro-Empfindlichkeit
nicht indiziert.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Multiresistente Erreger Resistenzbericht 2011
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Carbapenemresistenz
Im Jahr 2009 fanden wir in unserem Untersuchungsgut 3 Enterobakterien, die eine
Resistenz gegen Imipenem, Meropenem oder Ertapenem aufwiesen.
2011 fanden wir bereits 10 Enterobakterien mit Carbapenemresistenzen.
Alle Stämme wiesen zusätzlich Resistenzen gegen ß-Lactamantibiotika, Aminoglykoside,
Trimethoprim, Nitrofurantoin, Chinolone oder Tetrazykline auf.
Die folgende Grafik zeigt die Häufigkeitsverteilung von ESBL-bildenden Enterobakterien im
Einsendegut des Mikrobiologischen Labors im LKH Leoben im Laufe der letzten Jahre. Im
Vordergrund stehen ESBL-bildende E.coli und Klebsiella.
Entsprechend dem generellen Trend steigt die Zahl der ESBL-Isolat jährlich an.
Abbildung 29: ESBL-Primärisolate im Jahresvergleich 2005 – 2011
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Die folgenden Tabellen zeigen den Vergleich der Resistenzlage von allen Primärisolaten von E.coli
und Klebsiella („normale“ E.coli + ESBL-Coli/Klebsiella) im Vergleich zu ESBL-Bildnern (nur
ESBL-Coli/Klebsiella) allein.
Tabelle 59: alle Escherichia coli 2011, alle Materialien, alle Zuweiser Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Aminopenicilline 2336 60,23 0,09 39,68 38,4 37 30,6 29,5 25,4 28,7
Amoxicillin/Clavulansre 2335 87,24 1,28 11,48 5,3 8,9 6,4 5,3 5 5,1
Piperacillin/Tazobactam 2094 95,18 1,67 3,15 1,8 5,1 1 0,3 0,5 0,7
Cefuroxim 1925 95,43 0,1 4,47 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 2324 99,05 0,13 0,82 1,3 4,7 0,9 0,1 0,1 0,1
Ceftazidim 1194 98,41 0,92 0,67 1,3 4,6 0,8 0,2 --- ---
Imipenem 552 99,82 0,18 0,2
Meropenem 1162 99,91 0,09
Gentamicin 2326 95,57 0,21 4,21 4,7 4,8 3,6 2,9 1,6 1,2
Amikacin 0,2
Trimethoprim 1790 75,81 0,06 24,13 26,9 26 20 17 15,3 15,8
Ciprofloxacin 2333 80,8 0,81 18,39 17,1 18 10,9 7,8 6,1 4,2
Nitrofurantoin 1722 97,39 0,58 2,03 0,9 0,8 0,7 0,4 0,6 1,3
Tigecyclin 391 100 1,3 --- --- --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Tabelle 60: Escherichia coli-ESBL bildend 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009 %R2007
Aminopenicilline 207 100 100 100
Amoxicillin/Clavulansre 207 14,01 85,99 100 100
Piperacillin/Tazobactam 183 37,16 11,48 51,37 100 100
Cefuroxim 163 100 --- ---
Cefotaxim 207 1,93 1,93 96,14 100 100
Ceftazidim 154 25,32 21,43 53,25 100 100
Cefepime 88 31,82 18,18 50 98,1 100
Gentamicin 207 83,09 4,83 12,08 15,3 14,2
Trimethoprim 165 21,82 78,18 90,2 83,8
Imipenem 128 100 0,8
Meropenem 202 98,02 1,98
Ertapenem 188 100 1,6
Ciprofloxacin 207 13,53 86,47 87,5 93,4
Fosfomycin 167 89,22 10,78 14,8 23,4
Nitrofurantoin 163 95,71 1,23 3,07 3,7 1,1
Mecillinam 64 48,44 51,56 12,4 Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Mit der Einführung der EUCAST-Richtlinien erfolgte eine Umstellung in der Definition von ESBL.
Wurden bisher die Cephalosporine , Aminopenicillin+Clavulansäure und Piperacillin+Tazobactam
automatisch als resistent eingestuft, so gilt nun die Devise „report as found“, allerdings für
Aminopenicillin+Clavulansäure und Piperacillin+Tazobactam nur bei Harnkeimen.
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Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Multiresistente Erreger Resistenzbericht 2011
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Tabelle 61: alle Klebsiella sp. 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Aminopenicilline 582 0,34 99,66 100 100 100 100 100
Amoxicillin/Clavulansre 587 86,71 0,68 12,61 7,94 9 9,1 8,2 8,9 8,7
Piperacillin/Tazobactam 578 89,45 2,94 7,61 5,29 6,1 4,5 3,4 3 4,9
Cefuroxim 492 86,79 0,41 12,8 --- --- --- --- --- ---
Cefotaxim 586 94,88 1,02 4,1 1,59 2,2 3 2,2 0,9
Ceftazidim 374 92,51 3,21 4,28 1,59 2,2 2,7 2,5 --- ----
Imipenem 254 100 0
Meropenem 418 99,76 0,24
Gentamicin 584 96,92 3,08 2,29 0,4 0,9 0,2 0,6 0,7
Amikacin 0,3
Trimethoprim 341 76,25 1,17 22,58 17,5 16,4 18,8 11,8 8,3 12,9
Ciprofloxacin 583 85,25 1,72 13,04 5,63 4,8 8,3 4 3 4,1
Tetrazyklin 132 76,52 3,79 19,7 10,7 12,9 13,6 --- --- ---
Trimethoprim/Sulfonamid 363 87,33 12,67 6,8 --- --- --- --- ---
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Tabelle 62: Klebsiella pneumoniae-ESBL bildend 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R2009 %R2007
Amoxicillin/Clavulansre 13 23,08 76,92 100 100
Piperacillin/Tazobactam 11 54,55 9,09 36,36 100 100
Cefotaxim 13 23,08 76,92 100 100
Ceftazidim 11 36,36 18,18 45,45 100 100
Gentamicin 13 53,85 46,15 33,3 10
Trimethoprim 9 22,00 11 67,00 100 66,7
Imipenem 11 90,09 9,01
Meropenem 11 90,09 9,01
Ertapenem 8 87,5 12,5 100
Ciprofloxacin 12 25 75 77,8 30
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Mit der Einführung der EUCAST-Richtlinien erfolgte eine Umstellung in der Definition von ESBL.
Wurden bisher die Cephalosporine , Aminopenicillin+Clavulansäure und Piperacillin+Tazobactam
automatisch als resistent eingestuft, so gilt nun die Devise „report as found“, allerdings für
Aminopenicillin+Clavulansäure und Piperacillin+Tazobactam nur bei Harnkeimen.
Der weitaus überwiegende Teil der ESBL-bildenden Enterobakterien wurde aus Harnproben isoliert
( 171 aus Harn, 19 aus dem Respirationstrakt, 8 aus Wunden,….).
Hinweise auf multiresistente Erreger durch das Mikrobiologische Laboratorium Leoben
Zur Verhinderung der Übertragung von multiresistenten Erregern
werden die zuständigen ÄrztInnen sofort telefonisch informiert,
wenn die Resistenztestung zwei oder weniger wirksame Antibiotika
zeigt.
Außerdem wird in den mikrobiologischen Befund die Anmerkung
„Multiresistenter Erreger! Eine Übertragung auf andere
Personen ist zu vermeiden!„ geschrieben
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Anaerobier Resistenzbericht 2011
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Anaerobier Im Jahr 2011 wurden von 451 Proben von 356 Patienten Anaerobier identifiziert.
Abbildung 30: Anaerobier 2011, Orientierende Verteilung der häufigsten Gattungen
Bei entsprechenden Entnahmeorten oder Diagnosen (Abszess, Peritoneum, Aspirationspneumonie,
tiefe Wunden…) werden grundsätzlich aerob und anaerob wachsende Bakterien gesucht. Häufig
finden sich Mischinfektionen mit mehreren Erregern; die Reinzüchtung der einzelnen Stämme kann
mehrere Tage dauern.
Ab 2006 werden routinemäßig nur Keime aus Blutkulturen, von Reinkulturen und Isolaten nach
Versagen der empirischen Therapie identifiziert und gegen Amoxicillin/Clavulansäure und
Metronidazol getestet. Bei einer bereits eingeleiteten Therapie mit Penicillin, Ampicillin,
Clindamycin, Carbapenemen oder Piperacillin/Tazobactam wird das entsprechende Antibiotikum
zusätzlich getestet.
Die Auswertung in der folgenden Tabelle bezieht sich auf alle anaeroben Isolate unabhängig von der
Bakterienfamilie, -gattung oder –art (Spezies).
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Anaerobier Resistenzbericht 2011
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Tabelle 63: alle Anaerobier 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003 %R
2002
Amoxicillin/Clavulansre 241 100 1,6 0,9 0,8 1,2 1,4 0,9
Metronidazol 260 69,62 0,38 30 21,4 14,5 14,3 10,5 9,3 14,3
Clindamycin 103 78,64 1,94 19,42 12,5 --- --- --- --- ---
Piperacillin/Tazobactam 55 90,91 9,09
Penicillin 24 95,83 4,17
Vancomycin 18 94,44 5,56
Rifampicin 11 100 Berücksichtigt wurden alle Isolate.
In der hohen Resistenzrate gegen Metronidazol schlägt sich die natürliche Resistenz der
Propionibakterien nieder.
Nach Exklusion der Propionibakterien 2011 beträgt die Resistenzrate für Metronidazol
11,22%.
In der Folge nun einige Spezies im Detail
Tabelle 64: diverse Anaerobier 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Keim Antibiotika getestet %S %I %R %R2009
Bacteroides fragilis
Amoxicillin/Clavulansre 56 100 4,1
Metronidazol 65 95,38 4,62 2,6
Clostridium perfringens
Metronidazol 7 100
Penicillin 6 100
Clindamycin 6 66,67 16,67 16,67 12,5
Finegoldia magna
Amoxicillin/Clavulansre 18 100
Metronidazol 18 94,44 5,56
Prevotella bivia
Amoxicillin/Clavulansre 18 100
Metronidazol 19 84,21 5,26 10,53 3,3
Propionibacterium acnes
Amoxicillin/Clavulansre 57 100
Clindamycin 50 88 12 2,1
Metronidazol 45 100 100
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Pilze Resistenzbericht 2011
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Pilze
Vor allem Sprosspilze werden im diagnostischen Routinematerial des Mikrobiologischen Labors
Leoben häufig gezüchtet. Bei nicht invasiven Materialien werden diese am Befund angegeben ohne
weitere Identifizierung oder Resistenztestung.
Bei Wachstum in bakteriologischen Kulturen von invasiv gewonnenen Materialien werden die Pilze
immer identifiziert, eine Resistenztestung wird bei Blut- und Liquorproben routinemäßig
durchgeführt, bei allen anderen Materialien nur auf Anforderung.
Gezielte mykologische Untersuchungen (Pilzkulturen) werden im Mikrobiologischen Laboratorium
des LKH Leoben nur auf Anforderung durchgeführt. Der Nährbodensatz ist auf den Nachweis von
Sproßpilzen ausgelegt, bei Materialien von Augen, Ohren und Kieferhöhlen werden auch
Schimmelpilze gesucht. Bei BAL, Lungenbiopsie und Kieferhöhlenausschabungen wird routinemäßig
auf Sproß- und Schimmelpilze untersucht.
Dermatophytendiagnostik wird im Mikrobiologischen Laboratorium des LKH Leoben nicht betrieben.
Die Resistenztestung wird mit E-Tests der Fa. Bio Merieux sowohl bei Spross- als auch bei
Schimmelpilzen durchgeführt. Routinemäßig werden Amphotericin B, Fluconazol, Voriconazol und
Caspofungin getestet. Bei diesen sowie bei Itraconazol und 5-Fluorocytosin gibt es
Interpretationsrichtlinien. Bei den anderen Antimykotika werden im Befund die MHK-Werte ohne
Interpretation angegeben.
Abbildung 31: Verteilung aller Sprosspilzbefunde 2011
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Pilze Resistenzbericht 2011
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Abbildung 32: Verteilung aller Schimmelpilzbefunde 2011
Tabelle 65: diverse Pilze 2011, alle Materialien, alle Zuweiser
Keim Antibiotika getestet %S %I %R %R
2009 %R
2007 %R
2005 %R
2004 %R
2003
Candida albicans
Amphotericin B 31 100
Caspofungin 30 100 --- ---
Fluconazole 31 93,55 6,45 3 5,6 8,3
Voriconazol 30 96,67 3,33 4,2 --- ---
Candida glabrata
Amphotericin B 14 100
Caspofungin 16 100
Fluconazole 13 46,15 23,08 30,77 40 16,7 29,4
Voriconazol 16 56,25 12,5 31,25
Berücksichtigt wurden nur Primärisolate.
Mikrobiolog. Laboratorium Leoben Anhang Resistenzbericht 2011
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Anhang
Interessante Links:
Homepage von EARSS: http://www.rivm.nl/earss/
Update des Seuchenplans: http://www.verwaltung.steiermark.at/cms/ziel/2651878/DE/
Homepage des Instituts für Hygiene der Med. Uni Graz: http://www.hygiene-graz.at
(siehe unter Mikrobiologie > Bakteriologie > News > Resistenzbericht 2008,2009, 2010,
2011)
Österreichische Gesellschaft für antimikrobielle Chemotherapie: http://www.oegach.at
European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing: http://www.eucast.org
European Centre for Disease Prevention and Control: http://www.ecdc.europa.eu
Literatur
1. Antibiotika, Oskar Janata 2010, PM-Verlag
2. Antibiotikatherapie, 2. Auflage, Uni-Klinik Graz
3. Resistenzberichte des Hygieneinstituts der Universität Graz (www.hygiene-graz.at)
4. Antibiotikatherapie, Simon-Stille, 11. Auflage, 2005
5. Mikrobiologie im klinischen Alltag, Theuretzbacher, 2004, 2. Auflage
6. EUCAST, Clinical breakpointtables v 1.3 (until Dec. 31, 2011)
7. Prävention und Kontrolle von Clostridium difficile, AGES, 1. Auflage, September 2007