FREIE UND HANSESTADT HAMBURG BEHÖRDE FÜR GESUNDHEIT UND VERBRAUCHERSCHUTZ
FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 1 von 25 Freigabe: 10.04.2018 Prof. Dr. Wille
Leistungsverzeichnis HU 33
Inhaltsverzeichnis Präanalytische Maßnahmen .................................................................................................................... 2
Bereich: Bakteriologie und Mykologie ................................................................................................ 2
Allgemeine Hinweise ....................................................................................................................... 2
Lagerung bis zum Transport ............................................................................................................ 3
Durchführung und Dauer der Untersuchungen .............................................................................. 3
Leistungen ....................................................................................................................................... 4
Bereich: Virologie, Molekularbiologie und Infektionsimmunologie ................................................. 13
Allgemeine Hinweise ..................................................................................................................... 13
Durchführung und Dauer der Untersuchungen ............................................................................ 14
Leistungen ..................................................................................................................................... 15
Übersicht der möglichen Erreger nach Symptomkomplex bzw. Lokalisation ....................................... 24
Abkürzungsverzeichnis: ......................................................................................................................... 25
Literaturverzeichnis: .............................................................................................................................. 25
- 2 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 2 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Präanalytische Maßnahmen Bereich: Bakteriologie und Mykologie Allgemeine Hinweise
Probenröhrchen müssen mit Namen und Geburtsdatum des Patienten gekennzeichnet sein. Eine Codierung oder ein Aliasname darf nur verwendet werden, sofern ausschließlich Erregernachweise angefordert werden, für die keine namentliche Meldepflicht besteht (z.B. HIV-Untersuchungen).
Begleitschein möglichst exakt ausfüllen. Folgende Angaben sind für ein valides Labor-ergebnis besonders wichtig: Name, Vorname, Geschlecht und Geburtsdatum des Patienten, der genaue Entnahmeort und die Entnahmezeit, relevante klinische Informationen (incl. Erkrankungsbeginn, Verdachtsdiagnose, Immunsuppression und Auslandsaufenthalt), die gewünschte Untersuchung (s. u.) und eine evtl. antibiotische oder virostatische Vorbehandlung (inkl. Name des Medikaments). Nur so ist eine Befundinterpretation von Seiten des Labors möglich.
Hilfreich ist die Angabe einer Telefonnummer, falls telefonische Nachfragen erforderlich sein sollten.
Die Begleitscheine müssen vom Auftraggeber unterschrieben sein sowie Informationen zur Abrechnung enthalten.
Materialgewinnung möglichst vor Beginn einer antibiotischen Therapie.
Verwendung von geeigneten Abnahme- und Transportsystemen (werden von uns zur Verfügung gestellt).
Die Proben sollen möglichst schnell in das Labor gelangen. Bis zum Transport ist auf eine sachgerechte Lagerung zu achten. Nähere Angaben finden Sie weiter unten.
Bei dringenden Untersuchungen oder Materialien, die sofort verarbeitet werden müssen, bitte diese vorab telefonisch anmelden und den Transport nach Rücksprache organisieren.
Bei der Anforderung “Erreger und Resistenz” wird der Untersuchungsgang an dem für den Entnahmeort typischen Erregerspektrum ausgerichtet. Bei möglicher klinischer Relevanz der nachgewiesenen Keime wird ein Antibiogramm angefertigt.
Untersuchungen, die ausdrücklich angefordert werden müssen, da sie den Einsatz spezieller Kulturmedien erfordern, sind im folgenden Kapitel für die jeweiligen Untersuchungsmaterialien gesondert aufgeführt (z.B. Mykobakterien, Chlamydien, Gonokokken).
Abstrichtupfer sollten grundsätzlich in ein festes Transportmedium überführt werden, um das Material vor dem Austrocknen zu schützen und den Erhalt z.B. von Anaerobiern und anderen empfindlichen Erregern zu gewährleisten
Flüssige Materialien (z.B. Liquor, Eiter, Punktate) sollten in ein steriles Röhrchen gegeben werden.
Für den direkten Nachweis von Chlamydia trachomatis und Neisseria gonorrhoeae (molekularbiologisch) ist die Verwendung eines speziellen Transportmediums (Abnahmebesteck; rosa für Frauen, blau für Männer) erforderlich. Aus diesem System ist keine Kultur bzw. Resistenztestung möglich.
Alle Abnahmemedien können bei uns angefordert werden.
- 3 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 3 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Lagerung bis zum Transport
Beimpfte Urinkulturträger (z.B. Uricult) im Brutschrank bei 37°C
Abstrichtupfer (Screening und Wundabstriche), Eiter, Punktate, Blutkulturflaschen, Liquores, Katheterspitzen, Knochen und Knorpel bei Raumtemperatur
Abstrichtupfer (obere Atemwege und urogenital), Sputum, Trachealsekret, BAL, nativer Urin, Stuhl im Kühlschrank bei 4 - 8°C
Durchführung und Dauer der Untersuchungen
Art der Untersuchung Dauer der Bearbeitung Probenansatz
Kultur auf pathogene Keime inkl. Resistenzbestimmung
Aerobe Keime mind. 2 Tage Anaerobe Keime mind. 5 Tage
Täglich (Montag-Samstag)
Kultur auf Pilze Hefepilze 2 Tage Schimmelpilze 10 Tage Dermatophyten 4 Wochen
Täglich (Montag-Samstag)
Kultur auf Mykobakterien* 6-8 Wochen Täglich (Montag-Freitag)
EIA: C. difficile Antigen und A/B Toxin
Antigen- und Toxinnachweis 1 – 2 h, ggf. Kultur (in der Regel 2 Tage)
nach Probenaufkommen, in der Regel täglich (Montag-Samstag)
PCR: Atypische Pneumonieerreger (L. pneumophila, C. pneumoniae, M. pneumoniae, RealTime PCR) C. trachomatis –, N. gonorrhoeae (SDA) Darmpathogene E. coli (Shigatoxin, eaeA Gen, RealTime PCR)
In der Regel 1-2 Tage In der Regel 1-3 Tage In der Regel 1 Tag
Auf Anforderung täglich (Montag-Freitag) 2x wöchentlich Auf Anforderung täglich (Montag-Freitag)
- 4 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 4 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Leistungen
Abszessinhalt/Eiter/Wundinfektion
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe und anaerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Mikroskopie u. Kultur auf Mykobakterien Pilzkultur
Haut-/Weichteilinfektion, wie z.B. Abszess, eitrige Wundinfektion
Wenn möglich Punktate oder Gewebe/Biopsien einsenden, wie z.B. durch Punktion des Eiterherdes und Aspiration in steriler Spritze gewonnenes Material (so viel Material wie möglich). Sinnvoll ist die zusätzliche Entnahme eines Gewebestückchens von der Abszesswand, Synovia oder Gelenkkapselmaterial. Abstriche sollten wenn dann vom Wundgrund und den Wundrandbezirken abgenommen werden. Abstriche von Eiter sind ungeeignet. Punktate und Gewebe/Biopsien in sterilem Röhrchen einsenden. Gewebe/Biopsien ggf. mit etwas steriler Kochsalzlösung vor Austrocknung schützen. Abstrichtupfer mit Transportmedium/Gel verwenden. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung bei Raumtemperatur. Tagsüber sollte die Transportzeit wenn möglich 2 bis 4h nicht überschreiten. Falls Lagerung über Nacht stattfindet, Aufbewahrung im Kühlschrank. Siehe auch Knochen und Knorpel.
Atemwegsmaterial auf Mykobakterien (Tuberkulose)*
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Mikroskopisches Präparat: Auramin- bzw. Ziehl-Neelsen-Präparat Anzüchtung auf festen Nährböden und in Flüssigkultur Typisierung und Resistenzbestimmung Molekulare Nachweismethoden (NAT)
Lungentuberkulose Bei Kindern oder wenn kein Atemwegsmaterial gewonnen werden kann zusätzlich Untersuchung von Magensaft (2-5 ml, Neutralisation erforderlich!).
Mindestens drei an unterschiedlichen Tagen abgehustete Morgensputa in Einzelportionen (2-5 ml). Vorher nicht mit Leitungswasser spülen oder gurgeln. Bei erfolgloser Expektoration Provokation von Sputum. Bronchoskopische Absaugung (2-5 ml), Bürstenabstrich (in 0,5 ml steriler Kochsalzlösung) oder bronchoalveoläre Lavage (20 – 30 ml). Optimal sind 3 Proben von verschiedenen Tagen in sterilem Röhrchen/Becher. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Die Transportzeit sollte wenn möglich 24h nicht überschreiten.
Atemwegsmaterial auf pathogene Keime
Bronchialsekret
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport Basisprogramm: Grampräparat Semiquantitative Kultur auf aerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Pilzkultur Atypische Erreger mittels PCR (Legionellen, Chlamydien, Mykoplasmen) Mykobakteriendiagnostik
Infektionen der tiefen Atemwege: Bronchitis, Pneumonie Bei Pneumonie sollte auch an die Entnahme von Blutkulturen gedacht werden, insbesondere bei V. a. Pneumokokken-Pneumonie
Bronchoskopische Absaugung (2-5 ml) in sterilem Röhrchen. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12h ist zu vermeiden.
- 5 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 5 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Bronchoalveoläre Lavage (BAL)
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport Basisprogramm: Grampräparat Quantitative Kultur auf aerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Pilzkultur Anaerobier (nur bei V. a. Aspirationspneumonie, Pleuraempyem oder Lungenabszess) Atypische Erreger mittels PCR (Legionellen, Chlamydien, Mykoplasmen) Mykobakteriendiagnostik
Infektionen der tiefen Atemwege: Bronchitis, Pneumonie Bei Pneumonie sollte auch an die Entnahme von Blutkulturen gedacht werden, insbesondere bei V. a. Pneumokokken-Pneumonie
BAL ist das am besten geeignete Material zur Pneumoniediagnostik (1-10 ml). Die erste Portion Spülflüssigkeit der BAL verwerfen, da diese häufig stärker mit Normalflora kontaminiert ist. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12h ist zu vermeiden.
Sputum
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport Basisprogramm: Grampräparat Semiquantitative Kultur auf aerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Pilzkultur Atypische Erreger mittels PCR (Legionellen, Chlamydien, Mykoplasmen) Mykobakteriendiagnostik
Infektionen der tiefen Atemwege: Bronchitis, Pneumonie Bei Pneumonie sollte auch an die Entnahme von Blutkulturen gedacht werden, insbesondere bei V. a. Pneumokokken-Pneumonie
Die richtige Gewinnung einer Sputumprobe sollte dem Patienten erklärt werden. Am besten geeignet ist das 1. Morgensputum. Dazu den Mund gut mit Leitungswasser ausspülen (Reduktion der Normalflora). Dann gründlich abhusten in einen Sputum-Becher (2-5 ml). Bei erfolgloser Expektoration Provokation durch Inhalation von Kochsalzlösung (3 %ig). Keinen Speichel einschicken. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank um eine Überwucherung durch Keime der Mundflora zu vermeiden. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12h ist zu vermeiden.
Trachealsekret
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport Basisprogramm: Grampräparat Semiquantitative Kultur auf aerobe Keime Resistenzbestimmun Nur auf Anforderung: Pilzkultur Atypische Erreger mittels PCR (Legionellen, Chlamydien, Mykoplasmen) Mykobakteriendiagnostik
Infektionen der tiefen Atemwege: Bronchitis, Pneumonie. Bei Pneumonie sollte auch an die Entnahme von Blutkulturen gedacht werden, insbesondere bei V. a. Pneumokokken-Pneumonie
Mit einem sterilen Katheter Sekret so weit wie möglich aus den tiefen Abschnitten des Bronchialbaums aspirieren (2-5 ml). Bei liegender Trachealkanüle auf aseptische Abnahmebedingungen achten, da häufig Kontaminationen durch Mundhöhlenflora auftritt. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12h ist zu vermeiden.
- 6 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 6 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Blutkulturen
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Automatisiertes Kultursystem Bei Detektion: Grampräparat Kultur und Differenzierung aerober und anaerober Keime und Pilze Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Verlängerte Kulturzeit z.B. bei Brucellose-Verdacht
Sepsis, Katheterinfektion, Endokarditis, Pneumonie, systemische Infektion, Fieber unklarer Genese
In der Regel sollten 2-4 Blutkultursets entnommen werden, unabhängig von der Fieberhöhe. Es sollte immer eine aerobe und eine anaerobe Flasche, bei Verdacht auf Pilze zusätzlich eine Pilzflasche befüllt werden. Optimal sind bei Erwachsenen 10 ml Blut pro BK Flasche. Bei V. a. Katheterinfektion sollte zur Bestimmung der Differential Time to Positivity eine BK aus dem Katheter und zeitgleich eine weitere durch periphere Venenpunktion entnommen werden. Die Abnahme sollte immer nach sorgfältiger Hautdesinfektion und wenn möglich vor Beginn einer Antibiotikatherapie durchgeführt werden. Die Zwischenlagerung bis zum Transport erfolgt bei Raumtemperatur. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 4h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12 bis 16h ist zu vermeiden.
Gehörgangsabstrich
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: anaerobe Kultur Pilzkultur
Otitis externa Tupferabstrich unter Sicht (Spekulum) von geröteten oder sekretbedeckten Bereichen; Tupfer in ein Transportmedium stecken. Berührung unauffälliger Bereiche vermeiden. Bei trockenen Läsionen Tupfer vorher mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung anfeuchten oder (insbesondere bei Verdacht auf Otomykose) Entnahme von einigen Hautschuppen mit einem sterilen Spatel. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12h ist zu vermeiden.
Gelenkpunktat
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe und anaerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Pilzkultur
Arthritis Bei Verdacht auf postinfektiöse Arthritis Serum zum Antikörper-Nachweis einsenden.
s.u. ”Abszessinhalt/Eiter/Wundinfektion” und „Knochen und Knorpel“
- 7 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 7 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Harnröhrenabstrich
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Pilzkultur Gonokokken kulturell Mykoplasmen und Ureaplasmen kulturell Chlamydien- und Gonokokken-SDA
Urethritis
Abstrich frühestens 3 Stunden nach der letzten Miktion abnehmen. Bereich um die Harnröhrenmündung mit Wasser und Seife reinigen, gut abspülen und mit sterilem Tupfer abtrocknen. Dünnen Abstrichtupfer 1-3 cm einführen und drehen, dann in Transportmedium überführen. Für Gonokokken und Chlamydien-SDA spezielles Abstrichbesteck und Transportmedium verwenden. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2-4h möglichst nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 24h ist zu vermeiden.
Katheterspitzen
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Semiquantitative Kultur auf aerobe Keim Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Anaerobe Keime Pilzkultur
Verdacht auf Katheter-assoziierte Infektion (z.B. ZVK-Infekt). An die Entnahme von Blutkulturen (zeitgleich zentral und peripher) zur Bestimmung der Differential Time to Positivity denken.
Zunächst Alkohol-Desinfektion der Insertionsstelle. Ziehen des Katheters nach Verdunstung des Alkohols (mind. 1 min). Ca. 5 cm des distalen Segmentes mit steriler Schere abschneiden und in ein steriles Röhrchen überführen, ggf. mit etwas steriler Kochsalzlösung vor Austrocknung schützen. Eine Keimzahl von ≥ 15 KBE an der Katheterspitze ist ein Hinweis auf eine Katheterbesiedlung (nach Maki). Transport ungekühlt bei Raumtemperatur möglichst rasch ins Labor. Lagerung bei 4°C für max. 24 h möglich.
Knochen und Knorpel
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Kultur auf aerobe und anaerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Pilzkultur Mykobakteriendiagnostik
Verdacht auf Osteomyelitis und infektiöse Arthritis Bei Verdacht auf hämatogene Osteomyelitis/Arthritis an die Abnahme von Blutkulturen denken.
Oberflächenabstriche sind bei Knocheninfektionen nicht geeignet. Hier sollten intraoperativ gewonnene Gewebe/Biopsien und Punktate eingesendet werden, wenn möglich 3-5 Proben aus regionär unterschiedlichen Abschnitten. Punktate und Gewebe/Biopsien in sterilem Röhrchen einsenden. Gewebe/Biopsien ggf. mit etwas steriler Kochsalzlösung vor Austrocknung schützen. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung bei Raumtemperatur. Tagsüber sollte die Transportzeit wenn möglich 2h nicht überschreiten. Siehe auch ”Abszessinhalt/Eiter/Wundinfektion”
- 8 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 8 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Konjunktivalabstrich
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Kultur auf aerobe Keime Nur auf Anforderung: Pilzkultur Gonokokken kulturell Chlamydien- und Gonokokken-SDA Adenovirus-PCR
Konjunktivitis Antimikrobielle Augentropfen und –salben rechtzeitig absetzen. Materialgewinnung möglichst vor Anwendung von Lokalanästhetika. Abstrichtupfer zur bakteriologischen und mykologischen Diagnostik mit Transportmedium/Gel verwenden. Für Gonokokken und Chlamydien SDA spezielles Abstrichbesteck und Transportmedium verwenden. Für Adenovirus-PCR trockenen Tupfer verwenden (kein Transportmedium/Gel). Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Tagsüber sollte die Transportzeit wenn möglich 2 bis 4h nicht überschreiten.
Liquor
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe und anaerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Mykobakterien Pilzkultur
Meningitis, Meningoenzephalitis, Hirnabszess Bei Meningitisverdacht ist die zusätzliche Abnahme von Blutkulturen zu empfehlen, da nicht selten der Erregernachweis nur über die Blutkultur gelingt.
Sorgfältige Hautdesinfektion wie für Blutkulturen beschrieben. Nach Verdunstung des Alkohols Lumbalpunktion mit sterilen Handschuhen. Auffangen des Liquors in mind. 2 Kunststoffröhrchen mit Schraubverschluss: eins für klinisch-chemische Untersuchungen (Zellzahl, Laktat, Zucker, Eiweiß etc.), ein zweites (steril) für mikrobiologische Untersuchungen (mindestens 1-5 ml). Ein drittes Röhrchen sollte bei Bedarf für serologische und virologische Untersuchungen verwendet werden. Die Röhrchen gut verschließen. Die wichtigsten Meningitis-Erreger sind sehr empfindlich. Daher unverzüglicher Transport ins Labor (optimal sind tagsüber 2h). Den Liquoranteil für bakteriologische Untersuchung bei Raumtemperatur lagern, auf keinen Fall kühlen. Die Portion für serologische und virologische Untersuchungen sollte aber im Kühlschrank gelagert werden. Sind sofortiger Transport und Verarbeitung nicht möglich, einen Teil des Liquors in eine Blutkulturflasche (entweder aerobe BK-Flasche oder Peds Plus/F) spritzen und diese bei Raumtemperatur lagern. Bitte immer zusätzlich Nativ-Liquor mitschicken; er wird für das Grampräparat, die Kultur und die Keimzahlbestimmung benötigt. Für die Mykobakterien-Diagnostik bitte möglichst 10– 15 ml im sterilen Röhrchen einsenden.
Magensaft*
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Mikroskopisches Präparat: Auramin- bzw. Ziehl-Neelsen-Präparat Anzüchtung auf festen Nährböden und in Flüssigkultur Typisierung und Resistenzbestimmung Molekulare Nachweismethoden (NAT)
Lungen-Tuberkulose Bei unproduktivem Husten bzw. Kindern kann die Untersuchung von Magensaft zusätzlich die Nachweisrate erhöhen. Generell sind Atemwegsmaterialien vorzuziehen.
Entnahme bei nüchternem Patienten morgens (2-5 ml). Für die Einsendung von Magensaft bitte Probenröhrchen mit Na-Phosphatpuffer verwenden, ggf. anfordern. Optimal sind 3 Proben von verschiedenen Tagen. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Die Transportzeit sollte bei neutralisierten Proben wenn möglich 24h nicht überschreiten.
- 9 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 9 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Mittelohrsekret
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe und anaerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Pilzkultur
Otitis media Aus dem Trommelfelldefekt austretendes Sekret mit Tupfer aufnehmen, dabei Berührung der Gehörgangswand vermeiden. Den Tupfer in ein Transportmedium stecken. Falls kein Defekt vorhanden, Abstrich unter Sicht vom Tubenausgang im Nasopharynx (Kontaminationsgefahr). Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12h ist zu vermeiden.
Nasennebenhöhlensekret
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe und anaerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Pilzkultur
Sinusitis Möglichst Punktion der Nebenhöhle und Aspiration von Sekret. Nebenhöhlen-Spülflüssigkeit ist häufig durch die physiologische Flora der Nasenschleimhaut kontaminiert. Material in sterilem Röhrchen einsenden. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank um eine Überwucherung durch Keime der physiologischen Flora zu vermeiden. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12h ist zu vermeiden.
Punktate aus sterilen Körperhöhlen: Pleura-, Perikard-, Peritoneal-Punktat
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe und anaerobe Keime Resistenzbestimmung Nur auf Anforderung: Pilzkultur Mykobakteriendiagnostik
Pleuritis, Perikarditis, Peritonitis Nach sorgfältiger Hautdesinfektion Punktion und Aspiration von 1 - 5 ml Flüssigkeit (so viel wie möglich). Bei sofortigem Transport ins Labor steriles Röhrchen verwenden. Anderenfalls sollte ein Teil des Punktats unter sterilen Kautelen in eine Blutkulturflasche (entweder aerobe BK-Flasche oder Peds Plus/F) gespritzt werden; bitte zusätzlich immer natives Punktat im sterilen Röhrchen einschicken (es wird für das Grampräparat und die Keimzahlbestimmung benötigt). Die Zwischenlagerung der Blutkulturen und Punktate im sterilen Röhrchen bis zum Transport erfolgt bei Raumtemperatur. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2 bis 4h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12 bis 16h ist zu vermeiden.
- 10 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 10 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Rachenabstrich
Untersuchung Klinische Angaben / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Kultur auf aerobe Keime ggf. Resistenztestung Nur auf Anforderung: Kultur auf Neisseria meningitidis Kultur auf Corynebacterium diphtheriae Kultur auf Gonokokken Pilzkultur Gonokokken-SDA
Pharyngitis, Angina tonsillaris, Verdacht auf Scharlach Verdacht auf Meningokokken-Keimträger, Diphtherie, Mundsoor (Candida) oder oropharyngeale Gonokokkeninfektion
Zunge mit Spatel herunterdrücken. Abstrich aus entzündeten oder mit Sekret bedeckten Stellen der Tonsillen, Gaumenbogen oder der hinteren Rachenwand entnehmen. In Tonsillarkrypten Material unter Drehen entnehmen. Membranöse Beläge möglichst anheben und von der Unterseite Material entnehmen. Tupfer anschließend in Transportmedium stecken. Bei V.a. Diphtherie: Pseudo-Membranen vorsichtig abheben. Material von der Unterseite und/oder vom Grund der Läsion mit Tupfer entnehmen. Wenn Membranen nicht vorhanden sind, Abstriche von Nasopharyngealraum, Tonsillen und ggf. Kehlkopf durchführen. Für Gonokokken spezielles Abstrichbesteck und Transportmedium verwenden. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank um eine Überwucherung durch Keime der Mundflora zu vermeiden. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2h nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 12h ist zu vermeiden.
Rektalabstrich
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Kultur auf darmpathogene Keime Nur auf Anforderung: Pilzkultur Gonokokken kulturell Chlamydien- und Gonokokken-SDA Screening auf resistente Erreger (s. Screening-abstriche)
Infektiöse Proktitis Ggf. als Screening-Lokalisation
Seitenlagerung des Patienten mit angewinkelten Knien. Abstrichtupfer mindestens 5 cm in die Analöffnung einführen und mehrfach drehen. Tupfer in Transportmedium einbringen. Für Gonokokken und Chlamydien SDA spezielles Abstrichbesteck und Transportmedium verwenden. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung bei Raumtemperatur. Tagsüber sollte die Transportzeit 2-4h möglichst nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 24h ist zu vermeiden.
Screeningabstriche Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Nur auf Anforderung: MRSA/ORSA ESBL/MRGN VRE
Nachweis von multiresistenten Erregern, wie z.B. MRSA, VRE, ESBL-Bildnern, 3MRGN, 4MRGN
Mögliche Screeninglokalisationen: Abstriche von Nase, Rachen, Leiste, Perineum, Anus, Wunden Abstrichtupfer mit Transportmedium verwenden. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung bei Raumtemperatur. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2-4h möglichst nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 24h ist zu vermeiden.
- 11 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 11 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Stuhl-Diagnostik Bakteriologie und Parasitologie
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Kultureller Nachweis: Campylobacter Clostridium difficile (+ Toxinnachweis EIA und/oder PCR) Enterohämorrhagische E. coli (EHEC) (+PCR Shigatoxine) Enteropathogene E. coli EPEC (+ PCR eaeA Gen) Enterotoxische E. coli ETEC (+ PCR lth/sth Gen) Enteroinvasive E. coli EIEC (+ PCR ipaH Gen) Salmonellen/ Shigellen Vibrionen/ Aeromonaden Yersinien Mikroskopischer Nachweis: Cryptosporidien Darmprotozoen und Wurmeier Mikrosporidien Bio- und Serotypisierung: Campylobacter (Artbestimmung) E. coli Listeria Salmonella Shigella Vibrio Yersinia Nukleinsäurenachweis: Pathogene Escherichia coli: EHEC, EPEC, ETEC, EAEC, EIEC/ Shigellen, DAEC
Gastroenteritis, Enterokolitis Stuhl in sauberes Gefäß absetzen. Eine haselnussgroße Portion mit Löffelchen in das Stuhlröhrchen übertragen. Sind zusätzlich Antigen-untersuchungen gewünscht (z.B. EIA) sollte das Stuhlröhrchen zur Hälfte gefüllt sein. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Jede Stuhlprobe sollte tagsüber optimalerweise innerhalb von 4h spätestens aber nach 24h im Labor verarbeitet werden.
Stuhlproben zur Untersuchung auf empfindliche Erreger wie z.B. Campylobacter sollten möglichst bei mehr als eintägiger Transportdauer in Transportmedien wie z.B. Cary-Blair-Medium versandt werden. Kulturen auf C. difficile sollten möglichst kurzfristig, spätestens innerhalb von 24 Std. angelegt werden. Bei Verdacht auf Ruhr körperwarme Stuhluntersuchung nötig, da Shigellen schnell absterben. Bei V.a. auf Typhus bitte an die Abnahme von Blutkulturen denken. Zum Ausschluss von darmpathogenen Protozoen und Wurmeiern sind 3 Stuhlproben, entnommen an drei aufeinanderfolgenden Tagen, sinnvoll.
Stuhl auf Pilze
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Nur auf Anforderung: Kultureller Nachweis von Sprosspilzen mit Differenzierung Semiquantitative Mengenangabe
Die Untersuchung ist sinnvoll bei: längerer Antibiotikatherapie immundefizienten Patienten nach Zytostatikatherapie
s. „Stuhl-Diagnostik Bakteriologie und Parasitologie“
- 12 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 12 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Urin
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Nachweis antibakterieller Hemmstoffe quantitative Kultur auf aerobe Keime (aus Mittelstrahlurin) Nur auf Anforderung: Pilzkultur (aus Mittelstrahlurin) Mykoplasmen und Ureaplasmen kulturell (aus Erststrahlurin) Chlamydien- und Gonokokken-SDA (aus Erststrahlurin)
Zystitis, Pyelonephritis Urethritis Morgenurin ist zur bakteriologischen Untersuchung am besten geeignet. Der Abstand zur letzten Miktion sollte mindestens 3 Std. betragen. Bei Einsendung von Eintauchnährböden können Grampräparat und Hemmstofftest nicht durchgeführt werden. Wichtig für die Bewertung ist die Angabe der Art der Uringewinnung (Mittelstrahlurin, Dauerkatheter, Punktion). Bei Dauerkatheter-Trägern darf der Urin nicht aus dem Beutel entnommen werden, sondern muss durch Punktion der dafür vorgesehenen Einstichstelle oder des proximalen Abschnitts des Katheters nach Desinfektion der Einstichstelle gewonnen werden.
Ca. 5 – 10 ml Urin im sterilen Kunststoffröhrchen mit Schraubverschluss versenden. Röhrchen mit Konservierungsmedien wie z.B. Borsäure sind ungeeignet. Bis zum Transport ins Labor (tagsüber möglichst innerhalb von 2 h) im Kühlschrank aufbewahren (möglichst nicht länger als 24 Std.). Ist dies nicht möglich, sollte ein Eintauchnährboden verwendet werden. Abnahme von Mittelstrahlurin: Sorgfältige Reinigung der äußeren Genitalien mit nicht-desinfizierender Seife, gründliches Nachspülen mit klarem Wasser und trocken tupfen. Etwa die Hälfte der Blasenfüllung ins WC ablaufen lassen, dann Urin mittels sterilem Urinbecher auffangen ohne den Harnstrahl zu unterbrechen; die letzte Portion wieder ins WC laufen lassen. Urin aus dem Becher in ein steriles Kunststoffröhrchen umfüllen und dieses verschrauben.
Vaginalabstrich
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe Keime Nur auf Anforderung: Anaerobe Kultur Pilzkultur
Vaginitis, Vaginose
Tupferabstrich von der Scheidenschleimhaut. Materialgewinnung mit rotierender Bewegung, Tupfer in Transportmedium stecken. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2-4h möglichst nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 24h ist zu vermeiden.
Zervixabstrich
Untersuchung Indikation / Bemerkungen Probenentnahme und Transport
Basisprogramm: Grampräparat Kultur auf aerobe Keime Nur auf Anforderung: Anaerobe Kultur Pilzkultur Gonokokken kulturell Chlamydien- und Gonokokken-SDA
Zervizitis, Genitalinfektionen
Nach Spekulumeinstellung Zervix mit sterilem Tupfer trocken wischen. Dünnen Abstrichtupfer ca. 1 – 2 cm in den Zervikalkanal einführen. Materialgewinnung mit rotierender Bewegung. Tupfer in Transportmedium stecken. Für Gonokokken und Chlamydien SDA spezielles Abstrichbesteck und Transportmedium verwenden. Bis zum Transport ins Labor Aufbewahrung im Kühlschrank. Tagsüber sollte die Transportzeit optimalerweise 2-4h möglichst nicht überschreiten. Eine Zwischenlagerung von mehr als 24h ist zu vermeiden.
- 13 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 13 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Bereich: Virologie, Molekularbiologie und Infektionsimmunologie Allgemeine Hinweise Probenröhrchen müssen mit Namen und Geburtsdatum des Patienten gekennzeichnet sein. Eine Codierung oder ein Aliasname darf nur verwendet werden, sofern ausschließlich Erregernachweise angefordert werden, für die keine namentliche Meldepflicht besteht (z.B. HIV-Untersuchungen).
Begleitschein möglichst exakt ausfüllen. Folgende Angaben sind für ein valides Labor-ergebnis besonders wichtig: Name, Vorname, Geschlecht und Geburtsdatum des Patienten, der genaue Entnahmeort und die Entnahmezeit, relevante klinische Informationen (incl. Erkrankungsbeginn, Verdachtsdiagnose, Immunsuppression und Auslandsaufenthalt), die gewünschte Untersuchung (s. u.) und eine evtl. antibiotische oder virostatische Vorbehandlung (inkl. Name des Medikaments). Nur so ist eine Befundinterpretation von Seiten des Labors möglich.
Hilfreich ist die Angabe einer Telefonnummer, falls telefonische Nachfragen erforderlich sein sollten.
Die Begleitscheine müssen vom Auftraggeber unterschrieben sein sowie Informationen zur Abrechnung enthalten.
Sachgerechte Lagerung des Materials bis zum Probentransport ins Labor. Die für vi-rologische Untersuchungen eingesandten Materialien sollen gekühlt gelagert werden (ca. 4°C).
Bei Erregerdirektnachweisen ist die Probenahme im frühen Stadium der Erkrankung erfolgversprechend, bei indirekten Nachweisen über Antikörper steigt die Nachweis-Wahrscheinlichkeit mit Dauer der Erkrankung. Bei Antikörpernachweisen ist die Abnahme eines Serumpärchens hilfreich (eine Abnahme im frühen Krankheitsstadium, eine ca. 14 Tage später).
Liquor: 1-5 ml in sterilem Röhrchen, kein Transportmedium verwenden. Lagerung bei 4°C. Transport möglichst schnell, bei serologischen Nachweisen möglichst nicht länger als max. 48 Stunden. Eine zusätzliche Einsendung von Stuhlproben ist sinnvoll, insb. bei Verdacht auf Enterovirusinfektionen.
Serum: Für Antikörperbestimmungen und PCR (Ausnahmen siehe bei der Erregerliste) werden 5 - 10ml Blut benötigt. Serumproben können ungekühlt mit der normalen Post verschickt werden. Vollblut darf nicht eingefroren werden!
Stuhlproben: Röhrchen ca. bis zur Hälfte füllen (nicht mehr), Material zum Virusnachweis möglichst früh nach Symptombeginn entnehmen. Generell ist die Einsendung mehrerer Proben empfehlenswert, um die Nachweisrate zu erhöhen.
Abstriche: Abstriche für virologische Nachweise dürfen keinesfalls mit den Bestecken für die Bakteriologie durchgeführt werden, da das Transportmedium ungeeignet ist. Es werden spezielle Bestecke für die Virologie benötigt, die bei uns angefordert werden können. Steht kein spezielles Besteck zur Verfügung, kann notfalls ein trockener Tupfer in einem sterilen Gefäß verschickt werden. Lagerung bei ca. 4°C bis zum Transport, der möglichst schnell erfolgen sollte.
- 14 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 14 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Punktionsmaterial: Möglichst 2-5 ml gewinnen und in steriles Röhrchen geben. Nasenaspirat, Pleura-, Perikardial-, Peritonealflüssigkeit, Rachenspülwasser, Synovialflüssigkeit, BAL: Kein Transportmedium verwenden, Lagerung bei 4°C.
Sekrete: Bläscheninhalt (so viel wie möglich) sollte entweder steril aspiriert werden oder aus erst kürzlich aufgebrochenen Bläschen entnommen werden, da hier die Virusmenge noch groß ist. Schon verkrustete Effloreszenzen enthalten nicht mehr genügend Erreger.
Urin: Ca. 10 ml Urin in Urinmonovette geben. Kein Transportmedium verwenden, Lagerung bei ca. 4°C bis zum Transport, der möglichst schnell erfolgen sollte.
Biopsien: Sofern Austrocknung befürchtet wird, können 1 -2 ml sterile, physiologische Kochsalzlösung dazugegeben werden, Lagerung bei ca. 4°C bis zum Transport, der möglichst schnell erfolgen sollte.
Muttermilch: Kein Transportmedium verwenden, 1-5 ml in steriles Röhrchen, Lagerung bei ca. 4°C bis zum Transport, der möglichst schnell erfolgen sollte.
Durchführung und Dauer der Untersuchungen Alle serologischen und molekularbiologischen Untersuchungen werden auf Anforderung täglich von Montag bis Freitag durchgeführt. Die durchschnittliche Dauer der Bearbeitung beträgt bei CMIA Testungen (Serologieautomat) in der Regel 1 Tag, bei Immunoblot und EIA Testungen und Chlamydien- und Gonokokken SDA bis zu 3 Tage.
Verfahren in der Zellkultur (z. B. NT für Coxsackieviren, Virusanzucht aus Liquorproben u. ä.) dauern mehrere Tage bis zu 2 Wochen.
- 15 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 15 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Leistungen
Adenoviren
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgA-EIA* Serum Akute respiratorische Erkrankungen, Bronchitis, Pharyngitis, Konjunktivitis, Keratokonjunktivitis epidemica, hämorrhagische Zystitis, Gastroenteritis
Inkubationszeit 2 - 10 Tage. Lokal begrenzte Infektionen (Gastroenteritis, Konjunktivitis) lassen sich serologisch schlecht nachweisen. Der Erregernachweis ist pathognomonisch bei Augeninfektionen, Gastroenteritiden bei Säuglingen und respiratorischen Erkrankungen bei Säuglingen und Immundefizienten.
RealTime PCR Stuhl, Konjunktivalabstrich
Trockenen Tupfer verwenden (kein bakteriologisches Transportmedium)
Astroviren
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
RealTime PCR
Stuhl, Abstrich Gastroenteritis
Bordetella pertussis*
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-EIA (gegen Pertussis-Toxin, PT)*
Serum Anhalt für kürzlichen Erregerkontakt: PT-IgG-Antikörper ≥ 100 IU/ml (bezogen auf ein WHO-Referenzpräparat)
kein Anhalt für kürzlichen Erregerkontakt: IgG-PT < 40 IU/ml
Spezifität sichern: IgG-PT ≥ 40 IU/ml aber < 100 IU/ml (Untersuchung einer zweiten Probe)
Die Serodiagnostik ist für die Frühdiagnostik einer Erstinfektion ungeeignet, da spezifische Antikörper im Serum frühestens beim Übergang ins Stadium convulsivum nachweisbar sind. Ggf. direkten Erregernachweis mittels PCR* anstreben.
Borrelien
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-EIA Serum, Liquor*
V.a. Borrelieninfektion, Erythema migrans, Lyme-Arthritis, Neurologische Manifestationen, Lymphadenosis cutis benigna, Akrodermatitis chronica atrophicans, Karditis
Antikörper sind frühestens 4-6 Wochen nach Infektion nachweisbar.
Immunoblot (IgG, IgM) Serum Bestätigungstest bei positivem oder fraglichem EIA-Resultat.
PCR* Punktat oder Synovialbiopsie
V.a. Gelenkbeteiligung Gleichzeitige Untersuchung im Serum ist erforderlich, da negativer Direktnachweis in seiner Aussage beschränkt ist.
- 16 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 16 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Campylobacter jejuni/coli
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
Immunoblot (IgG, IgA) Serum Bestimmung von spezifischen Antikörpern zur Abklärung postinfektiöser Komplikationen (z. B. reaktive Arthritis oder Guillain-Barré-Syndroms)
Candida albicans
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
Antigen-EIA* Serum V.a. systemische Candida-Infektion Die Beurteilung eines einzelnen Titers ist schwierig, daher am besten 2 Seren in Abstand von ca. 14 Tagen einsenden. Bei V. a. septische Candida-Infektion Blutkulturen empfohlen.
Chlamydia pneumoniae
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-, IgA-EIA/Immunoblot*
Serum Pharyngitis, Sinusitis, Bronchitis, Pneumonie
Bei akuten Infektionen des Respirationstraktes, insb. "atypischer Pneumonie" ist eine PCR aus Atemwegssekreten empfehlenswert.
RealTime PCR Atemwegsmaterial akuten Infektionen des
Respirationstraktes, "atypische Pneumonie"
Chlamydia trachomatis
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
PCR Urogenitalabstrich, Erststrahlurin
Urogenital-Infektionen Spezielles Abnahmebesteck ist bei uns erhältlich. Nach antibiotischer Therapie kann die PCR noch für einige Zeit (max. 3 Wochen) positiv ausfallen, was nicht unbedingt auf Therapieversagen hindeuten muss.
Immunoblot (IgG, IgA)* Serum Reaktive Arthritis
Coxsackieviren
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
Antikörpernachweis mittels NT
Serum, Liquor Verdacht auf Coxsackievirus-Infektion bei fieberhaften Atemwegserkrankungen, Hand-Fuß-Mund-Krankheit, Sommergrippe, Enteritis, aseptische Meningitis, Myokarditis, Exanthemen, Konjunktivitis Differenziert werden AK gegen die Coxsackievirustypen B1, B2, B3, B4, B5 und A9
Eine erste Blutprobe sollte so früh wie möglich nach Auftreten der Symptome gewonnen werden, eine zweite zur Bestimmung eines Titeranstieges 10 – 14 Tage später
Anzucht (Zellkultur)
Stuhl, Liquor
- 17 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 17 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Cytomegalieviren*
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-EIA Serum Nachweis der Infektion bzw. einer Reaktivierung unter Immunsuppression, bei Immundefekt oder während der Schwangerschaft. Hohe Bedeutung als prä- oder perinatale Infektion.
Bei immunsupprimierten Erkrankten ist zum Zeitpunkt der Infektion häufig kein oder ein verspäteter Antikörpernachweis möglich. Ein singulärer oder im Vergleich zum IgG hoher IgM-Titer spricht für eine Primärinfektion. Kreuzreaktion mit EBV-AK ist möglich.
RealTime PCR Urin, Abstrich, Muttermilch, Biopsie, Liquor, BAL, Serum
Diphtherie-Toxoid-Antikörper
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-EIA* Serum Überprüfung des Impfschutzes gegen Diphtherie Bei V.a. akute Infektion Rachenabstrich zum direkten Erregernachweis einsenden.
Echoviren (s.a. Enteroviren)
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgA-EIA* Serum Verdacht auf Enterovirus-Infektion bei fieberhaften Atemwegserkrankungen, Sommergrippe, Enteritis, aseptische Meningitis, Myokarditis
Lokal begrenzte Infektionen lassen sich serologisch schlecht nachweisen. Es wird der direkte Erregernachweis per PCR empfohlen.
Anzucht (Zellkultur)
Stuhl, Liquor
Enteroviren
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
RealTime PCR, Zellkultur
Stuhl, Erbrochenes, Liquor, Abstrich, Biopsie, Serum, Urin, Bläscheninhalt
Verdacht auf Enterovirus-Infektion bei fieberhaften Atemwegserkrankungen, Sommergrippe, Enteritis, aseptische Meningitis, Myokarditis, Exanthemen, Konjunktivitis
Sofern die Virusanzucht gelingt, kann eine Erregertypisierung über Zellkultur durchgeführt werden
IgA-, IgG-EIA*
Serum Lokal begrenzte Infektionen
lassen sich serologisch schlecht nachweisen. Es wird der direkte Erregernachweis per PCR empfohlen.
Epstein-Barr-Viren (EBV)*
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
RealTime PCR* Liquor, respiratorische Sekrete, Abstrich, Biopsie, EDTA-Blut
Verdacht auf primäre oder reaktivierte EBV-Infektion, infektiöse Mononukleose, EBV-assoziierte Hepatitis, chronisch-aktive EBV-Infektion, Müdigkeits-Syndrom
Inkubationszeit 4 - 7 Wochen
EBNA-I-IgG-, VCA-IgM-, VCA-IgG-EIA*
Serum
- 18 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 18 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Frühsommer-Meningoenzephalitis-Virus (FSME)*
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-EIA* Serum Symptomatische Erkrankung nach Zeckenbiss oder Impfstatus bzw. Nachweis einer durchgemachten Infektion.
Die Höhe des IgG-Titers lässt keine Aussage über die Dauer der Immunität zu
Hepatitis A-Virus
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-CMIA Serum Diagnose einer akuten Hepatitis A. Immunstatus-Bestimmung vor Impfung.
Nach durchgemachter Infektion lebenslange Immunität. Serologisch keine Unterscheidung zum Zustand nach Impfung möglich (in diesem Fall Intervalle für Auffrischimpfungen beachten).
RealTime PCR Stuhl Diagnose einer akuten Hepatitis A, Nachweis der Infektiosität
Hepatitis B-Virus
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
HBs-Ag-CMIA inkl. Bestätigungstest
Serum Hinweis auf akute oder chronische Infektion, Untersuchung auf Infektiosität
In Kombination mit anti-HBc: Hepatitis-B-Screening.
IgG-, IgM-anti-HBc-CMIA
Serum Untersuchung vor Impfung Marker der durchgemachten Infektion, bei positivem IgG erfolgt weitere Differenzierung
anti-HBs-CMIA Serum Untersuchung der Immunität, Impfkontrolle Immunitätsmarker HBe-Ag-CMIA Serum Untersuchung der Infektiosität, Verlaufskontrolle
bei chronischer Hepatitis Bei positivem Nachweis muss eine Virusreplikation angenommen werden. Spricht für relativ hohe Infektiosität.
anti-HBe-CMIA Serum Untersuchung der Infektiosität, Verlaufskontrolle bei chronischer Hepatitis
Gleichzeitiger Nachweis von HBs-Ag und HBe-AK spricht für eine relativ geringe Infektiosität.
RealTime PCR* Serum Nachweis der HBV-Replikation (qualitativ) Auch bei unklaren serologischen Konstellationen sinnvoll
Hepatitis C-Virus
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
Anti-HCV-CMIA Serum Verdacht auf Hepatitis C AK werden oft erst 3-6 Monate nach einer Infektion gebildet.
Immunoblot Serum Bestätigungstest des Screening-CMIA
HCV-Ag-CMIA Serum Verdacht auf aktive Hepatitis C (qualitativ) Nachweis der Virämie.
RealTime PCR* Citratblut, Serum Verdacht auf aktive Hepatitis C (qualitativ) Nachweis der Virämie.
- 19 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 19 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Hepatitis E-Virus*
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
Antikörpernach-weis (IgG, IgM)*
Serum Verdacht auf Hepatitis E IgM-Antikörper sind beim immunkompetenten Patienten bereits bei Auftreten der ersten Symptome nachweisbar IgG-Antikörper können mehrere Jahre nach einer Hepatitis E-Infektion persistieren. Es ist jedoch unklar, ob eine lebenslange Immunität bestehen bleibt. Chronische Infektionen bei Immun-supprimierten möglich
Herpes-Simplex-Virus Typ 1 und 2
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-EIA* Serum Verdacht auf HSV-Infektion, insb. Primärinfektionen oder Enzephalitis
Nachweis von IgM-AK spricht für eine Primärinfektion. Bei Reaktivierung häufig kein IgM-Anstieg.
RealTime PCR Liquor, Abstrich, Bläscheninhalt, Sekrete, Serum, Biopsie
Bei positiver PCR kann zwischen HSV-1 und HSV-2-Infektion unterschieden werden
Humanes Immundefizienzvirus (HIV) Typ 1 und 2
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
Antigen-Antikörper Combotest CMIA
Serum Verdacht auf HIV-Infektion Screeningtest mittels Nachweis von HIV-AK und/oder p24-Ag. Jedes positive Ergebnis wird im Immunoblot bestätigt.
Immunoblot Serum Bestätigungstest In seltenen Fällen (bei positivem EIA und negativem Blot) könnte das Ergebnis im EIA auf die p24-Ag-Komponente zurückzuführen sein. In diesen Fällen wird ein p24-Ag-Bestätigunsgtest oder eine PCR durchgeführt.
RealTime PCR* EDTA-Blut Diagnose der akuten Infektion bei noch negativem Antikörperstatus, Abklärung von fraglichen Resultaten in der Antikörperdiagnostik (qualitativ)
Ein negatives Resultat schließt eine HIV-Infektion nicht aus, da die Viruslast ggf. unterhalb der Nachweisgrenze liegen kann.
Influenzaviren A und B (saisonal)
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgA-EIA* Serum Nachweis einer akuten Infektion bei respiratorischem Infekt mit Fieber, Tracheobronchitis, Laryngo-Tracheitis, Pneumonie. Komplikationen: Myokarditis, Meningitis, Enzephalitis, Reye-Syndrom. Folgeerkrankungen: Sekundäre Pneumonie, Otitis media, Krupp.
Bei der Interpretation müssen ggf. Impfungen berücksichtigt werden. Es wird der direkte Erregernachweis mittels PCR empfohlen.
RealTime PCR Nasenabstrich, Rachenabstrich, BAL
Bei einer akuten Infektion ist die PCR der Serologie vorzuziehen
Influenza-Viren Typ A oder B können getrennt nachgewiesen werden
- 20 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 20 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Legionella pneumophila
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
RealTime PCR Atemwegsmaterial "atypische Pneumonie"
Lues siehe Treponema pallidum
Masernvirus
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-EIA Serum Diagnostik akuter Infektionen (IgM) oder zusammen mit IgG bei Verdacht auf Reinfektion. IgG: Impfschutzkontrolle, Feststellung des Immunstatus vor der Schwangerschaft, Verlauf von Maserninfektion oder Reinfektion
IgM ist meist 2 - 5 Tage nach Exanthemausbruch nachweisbar, persistiert aber für 4 - 5 Wochen oder länger. IgG ist 6 – 12 Tage nach Exanthem nachweisbar und steigt innerhalb von 2 – 4 Wochen auf hohe Titer an.
RealTime PCR Rachenab-strich, Abstriche von Konjunktiven und Nase, Liquor, Urin, Serum, Muttermilch
Bei Masernverdacht haben ca. 20 % der Betroffenen tatsächlich Masern, aber ca. 30 % Röteln und ca. 25 % Parvovirusinfektionen, was differentialdiagnostisch in Betracht gezogen werden sollte.
Mumpsvirus
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-EIA* Serum Differential-Diagnose: Parotitis, Pankreatitis, Meningitis, nach der Pubertät auch Orchitis.
IgM-Anstieg innerhalb von 2-4 Tagen nach Auftreten der ersten Symptome. IgG-Anstieg nach 6 Tagen mit lebenslanger Persistenz. Reinfektion mit abgeschwächter Symptomatik möglich. Falsch positive Reaktionen durch Kreuzreaktivität mit Parainfluenza Typ 2 sind möglich.
Mycoplasma pneumoniae
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen IgG-, IgM-, IgA-EIA*
Serum Generalisierte Infektionen, z.B. Myokarditis, Perikarditis
Bei akuten Infektionen des Respirationstraktes, insb. "atypischer Pneumonie" ist eine PCR aus Atemwegssekreten empfehlenswert.
RealTime PCR Atemwegs-material
akuten Infektionen des Respirationstraktes, "atypische Pneumonie"
- 21 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 21 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Neisseria gonorrhoeae
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
Anzucht oder PCR
Abstrich (z.B. Zervix, Urethra), Erststrahlurin
Insbesondere Urogenitalinfektion aber auch andere Schleimhäute können betroffen sein (Rektum, Oropharynx).
Spezielles Abnahmebesteck für die PCR ist bei uns erhältlich. Nach antibiotischer Therapie kann die PCR noch für einige Zeit positiv ausfallen, was nicht unbedingt auf Therapieversagen hindeuten muss.
Noroviren
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
RealTime PCR Stuhl, Erbrochenes Verdacht auf Norovirus-Infektion für epidemiologische Fragestellungen Unterscheidung in Genogruppe I und II möglich
Parainfluenza-Viren Typen 1-3
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgA-EIA* Serum Akute Infektionen des Respirationstraktes. Parainfluenza-Viren sind neben RSV die häufigsten Erreger viraler Infektionen des Respirationstraktes bei (Klein-) Kindern (Krupp).
Kreuzreaktionen zwischen den einzelnen Parainfluenzatypen einerseits und Mumps (insbesondere Typ 2) andererseits sind möglich. Es wird der direkte Erregernachweis mittels PCR* empfohlen.
Parechoviren
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
RealTime PCR Nasen-, Rachenabstrich, Liquor, Stuhl
Akute Infektionen des Respirations – und Gastrointestinaltraktes, aseptische Meningitis und Enzephalitis. Septische Krankheitsbilder bei Neugeborenen.
Parvovirus B19 (Ringelröteln)
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-EIA/Immunoblot* Serum Fragestellung Immunität bzw. Zustand nach Primärinfektion.
- 22 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 22 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Quantiferon Test (Tuberkulose)
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IGRA* 5 ml Lithium-Heparin Blut oder spezielles Abnahmeset
Verdacht auf eine aktive oder latente Tuberkulose Umgebungsunter- suchung von Kontaktpersonen Screening von Risikopatienten für eine Tuberkulose Screening von Personen im Gesundheitswesen Nachweis einer latenten Infektion vor immunsuppressiver Therapie
Der Versand sollte nach der Blutentnahme so rasch wie möglich erfolgen, das Blut muss innerhalb von 16 Stunden im Labor sein, da dann die laborseitige Inkubation der Probe beginnen muss.
Rötelnvirus
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-CMIA* IgM-EIA*
Serum Nachweis einer akuten Rötelninfektion, Nachweis einer intrauterinen Rötelninfektion, Nachweis der Immunität
Bei V. a. frische Infektion Serumpärchen im Abstand von 1-2 Wo. untersuchen.
Rotaviren
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
RealTime PCR
Stuhl Verdacht auf Rotavirus-Infektion Erfasst wird der häufigste Typ
(Rotaviren der Gruppe A)
Tetanus-Toxoid-Antikörper
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-EIA* Serum Überprüfung des Impfschutzes gegen Tetanus
Treponema pallidum
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
Treponema-CMIA Partikelagglutinationstest (TPPA) modifizierter VDRL-Test (RPR) IgM-EIA IgM-Immunoblot
Serum Treponema pallidum-Infektion (Lues, Syphilis) sowie Therapiekontrolle
Bei Therapiekontrollen bitte falls vorhanden die Auftragsnummer der Voruntersuchung bzw. wann und wie eine Behandlung erfolgt ist (Antibiotikum, Dosierung und Behandlungsdauer) auf dem Einsendeschein angeben.
- 23 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 23 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Trichomonas vaginalis
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
PCR Urogenital-abstrich, Erststrahlurin
Urogenital-Infektionen Spezielles Abnahmebesteck ist bei uns erhältlich. Nach antibiotischer Therapie kann die PCR noch für einige Zeit (max. 3 Wochen) positiv ausfallen, was nicht unbedingt auf Therapieversagen hindeuten muss.
Varicella-Zoster-Virus
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
IgG-, IgM-EIA* Serum Verdacht auf Primärinfektion, Reaktivierung einer latenten VZV-Infektion (Herpes Zoster, Gürtelrose), Feststellung der Immunitätslage z.B. vor einer Schwangerschaft, Enzephalitis
Bei VZV-Kontakt in der Schwangerschaft Bestimmung der Immunitätslage.
RealTime PCR Abstrich, Bläschen-inhalt, Liquor, BAL, Fruchtwas-ser, Gewebe, Serum
Verdacht auf Infektion
Yersinien (Folgeerkrankungen)
Testauswahl Material Klinische Relevanz Bemerkungen
Immunoblot (IgG, IgM, IgA) Serum Verdacht auf postinfektiöse Arthritis Sofern eine akute Enteritis vorliegt, wäre die Einsendung einer Stuhlprobe zur Yersinienkultur sinnvoll
- 24 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 24 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Übersicht der möglichen Erreger nach Symptomkomplex bzw. Lokalisation Anmerkung: Der Schwerpunkt der Übersicht liegt auf Viren, da hierfür in der Regel eine gezielte Anforderung auf dem Einsendeschein erfolgen muss. Bakterien und ggf. Pilze sind weniger problematisch, da das Labor je nach Untersuchungsmaterial und Organsystem die optimalen Kulturbedingungen auswählt.
Symptomkomplex bzw. betroffenes Organsystem
Häufige Erreger Geeignetes Untersuchungsmaterial
Arthritis, postinfektiös Chlamydia trachomatis, Borrelien, Campylobacter, Salmonellen, Yersinien, Parvoviren, Streptokokken Gruppe A
Serum
Bronchitis, Tracheobronchitis, Krupp, Tonsillitis, Pharyngitis, Pneumonie
Adenoviren, Chlamydien, Coxiella burnetii, Cytomegalie-Virus bei Immunsupprimierten, Influenzaviren, Legionellen, Masernvirus, Enteroviren, Mykoplasma pneumoniae, Parainfluenzaviren, Respiratory-Syncytial-Virus, Legionellen, Streptokokken, Haemophilus
Serum, Rachenabstrich, Sputum, Bronchiallavage
Gastroenteritis Salmonellen, Yersinien, Campylobacter, pathogene E. coli, Adenoviren, Astroviren, Enteroviren, Noroviren, Rotaviren
Stuhl
Geschlechtsorgane Chlamydia trachomatis, Herpes-Simplex-Viren, Humane Papillomaviren, Neisseria gonorrhoeae, Treponema pallidum, Mykoplasmen
Abstrich, Serum
Harnwegsinfektionen E. coli, Proteus u. a. Enterobacteriaceae, Staphylokokken, Enterokokken, Pseudomonaden
Urin
Hautkrankheiten, Bläschen Enteroviren, Herpes-Simplex-Viren, Varicella-Zoster-Virus Abstrichmaterial, Serum, Punktionsmaterial, bei V.a. Enteroviren auch Stuhl
Hautkrankheiten, Exantheme
Adenoviren, Enteroviren, Epstein-Barr-Virus, Masernvirus, Rötelnvirus, HHV6
Serum, bei V.a. Enteroviren auch Stuhl
Hepatitis Cytomegalie-Virus, Epstein-Barr-Virus, Hepatitis-A, -B, -C-, E-Virus
Serum
Immunsystem, opportunistische Infektionen
Cytomegalie-Virus, Epstein-Barr-Virus, HIV Serum
Konjunktivitis, Keratitis Adenoviren, Chlamydien, Herpes-Simplex-Viren, Varicella-Zoster-Virus
Abstrichmaterial
Meningitis und Enzephalitis Adenoviren, Borrelien, Enteroviren, evtl. FSME-Virus, Herpes-Simplex-Viren, HIV, Influenzaviren, Masernvirus, Mumpsvirus, Treponema pallidum, Varicella-Zoster-Virus
Serum, Liquor, Stuhl
Mund- und Rachenschleimhaut- infektionen
Adenoviren, Enteroviren, Herpes-Simplex-Viren Abstrich, Serum
Muskulotrope Erreger Coxsackieviren, Influenzaviren Serum
Niere Adenoviren, Cytomegalie-Virus, Hantavirus (Nephritis) Serum
Perinatale Infektionen, Infektionen während der Schwangerschaft
Cytomegalie-Virus, Hepatitis-B-Virus, Hepatitis-C-Virus, Herpes-Simplex-Viren, Parvovirus B-19, Rötelnvirus, Varicella-Zoster-Virus
Serum (Mutter), Urin (Cytomegalie-Virus)
Persistierende Virusinfektionen
Cytomegalie-Virus, Epstein-Barr-Virus, Herpes-Simplex-Viren, HIV, Rötelnvirus, Varicella-Zoster-Virus
Serum
Cardiotrope Erreger Adenoviren, Coxsackie-Viren, Enteroviren, Herpes- Simplex-Viren, Influenzaviren, Cytomegalie-Virus
(Serum), Stuhl
- 25 -
* Diese Analysen werden zurzeit in einem kooperierenden externen Labor durchgeführt. Wir behalten uns bei den nicht durch Sternchen markierten Analysen vor, sie ggf. (auch ohne expliziten Hinweis an den Einsender) extern untersuchen zu lassen. FO-QMH-5.4-01 v01 Seite 25 von 25 Freigabe: 11.04.2018 Prof. Dr. Wille
Abkürzungsverzeichnis: AK Antikörper BAL Bronchoalveoläre Lavage CMIA Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay CMV Cytomegalie-Virus EBV Epstein-Barr-Virus EIA Enzymimmunoassay HSV Herpes-simplex-Virus NAT Nukleinsäure-Amplifikationstest NT Neutralisationstest (RealTime) PCR Polymerase Chain Reaction RPR Rapid plasma reagin card PT Pertussis-Toxin TPPA Treponema-pallidum-Partikel-Agglutination VDRL Venereal Disease Research Laboratories VZV Varicella-Zoster-Virus
Literaturverzeichnis: Neumeister, Geiss, Braun, Kimmig: Mikrobiologische Diagnostik, 2. Auflage 2009, Thieme Verlag Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) in der jeweils aktuellen Fassung